Progress of research on celastrol derivatives as anti-tumor agents
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摘要:
雷公藤红素是从中药雷公藤Tripterygium wilfordii Hook.f.根皮中分离得到的五环三萜类化合物，可抑制多种恶性肿瘤的生长，但也存在毒性大、水溶性差、靶向性欠佳等缺陷。因此，对其进行结构修饰是近年来的研究热点。已报道的雷公藤红素结构修饰主要集中在C-20-COOH及AB环的C-2、C-3、C-6位或多位点同时优化。本文主要依据不同的修饰位点、修饰目的（提高Hsp90-Cdc37 PPI抑制作用等）和修饰手段（基于骈和原理和特定靶点等），综述近年来雷公藤红素抗肿瘤类衍生物的研究进展。此外，还简要讨论了衍生物的抗肿瘤活性、作用机制和构效关系，以期能够为发现新的高效、低毒、选择性强的CEL衍生物提供理论指导。
Abstract:Celastrol, a pentacyclic triterpenoid compound derived from the root of Chinese herb Tripterygium wilfordii Hook.f.,can inhibit the growth of various types of malignant tumors. However, it still has some limitations, including high toxicity, poor water solubility, and low targeting efficiency. Therefore, structural modification of celastrol has become a research hotspot in recent years. The structural modifications of celstrol reported have focused on C-20-COOH and C-2, C-3, C-6 or multiple sites of AB ring. This review provides an overview of the research progress of anti-tumor celastrol derivatives in recent years according to different structural modification sites and purposes, such as enhancing the inhibitory effect on the Hsp90-Cdc37 protein-protein interaction, and modification methods, including principles of parallelism and targeting specific sites. In addition, it briefly discusses the antitumor activity, mechanism of action, and structure-activity relationship of these derivatives, aiming to provide theoretical guidance for the discovery of new celastrol derivatives with high efficiency, low toxicity, and strong selectivity.
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Keywords:
- celastrol /
- anti-tumor /
- structural modification /
- structure activity relationship
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口腔溃疡是一种临床上比较常见的口腔黏膜病变[1]，引起局部剧烈疼痛[2−3]。虽然大多数口腔溃疡具有自限性[4]，但复发率很高，严重时会影响患者的正常生活[5]。因此，促进口腔溃疡修复制剂的开发，具有重要的临床应用意义。
研究表明，口腔溃疡与细菌感染有一定关系[6−8]，碘单质能够直接卤化菌体蛋白质、杀死细菌、缓解伤口疼痛，因而用于口腔溃疡等疾病的治疗[9]。目前用于口腔溃疡治疗的碘制剂，主要有碘甘油和西地碘含片[10]，可通过杀灭口腔中的细菌，消除溃疡面周围淤肿，起到杀菌、止痛、促进口腔溃疡修复的效果。但常规碘制剂在口腔中作用时间短、不能对溃疡部位有效保护，影响了其疗效的发挥。因此开发具有黏附作用及创面保护效果的新型的复方碘制剂，具有重要的研究意义和应用价值。
凝胶剂具有良好的生物相容性和黏附性，并具有缓释作用[7, 11−12]，可延长药物在患处的作用时间，是目前口腔黏膜制剂的开发热点[13]。但凝胶剂在使用中存在不方便根据创面形状和大小调整，异物感较强，不易操作等问题。原位凝胶是以溶液状态给药后，能在用药部位快速发生相转变，由液态转化形成半固体凝胶的制剂，具有使用方便，可灵活调整大小形状的优势[14]。
本研究基于原位凝胶技术，设计开发了喷雾原位膜剂，具有成膜快，厚度薄的优势，更有利于口腔黏膜使用。基于该技术，制备的复方碘口腔喷雾原位膜，药液呈雾状喷出，在口腔溃疡创面形成原位膜，不仅对创面形成保护作用，并具有缓释效果，延长药物作用时间。本研究对聚丙烯酸树脂、海藻酸、羧甲基纤维素钠等为成膜材料进行筛选，并通过处方优化，制备了新型复方碘口腔喷雾原位膜，进一步对药液及原位膜的理化性质、体外释放、生物相容性及促口腔溃疡修复效果进行了体外及体内评价。该研究拓展了复方碘制剂在口腔溃疡治疗中的研究和应用，为新型口腔膜剂的设计和开发提供了新思路。
1. 材 料
1.1 药品与试剂
海藻酸钠、氯化钙、冰醋酸（国药集团化学试剂有限公司）；聚丙烯酸树脂L-100（Eudragit L-100 德国Evonik公司）；羧甲基纤维素钠（CMC-Na，上海源叶生物科技有限公司）；甘油（西陇科学股份有限公司）；乌来糖（南京都莱生物技术有限公司）；其他试剂均为市售分析纯。
1.2 细胞与动物
新西兰兔，雄性，3~4月龄，体重（2 ± 0.2） kg，合格证号：SYXK（苏）2023-0080；江苏大学动物中心提供。小鼠胚胎成纤维细胞3T6-Swiss albino购自中国科学院细胞库。所有动物实验均符合动物伦理委员会标准。
1.3 仪 器
DF-101S集热式恒温加热磁力搅拌器（巩义市创远仪器制造有限公司）； TU-1901紫外可见分光光度计（北京普析通用仪器有限公司）；800 TS酶标仪（南京必翔生物科技有限公司）；ECLIPSE Ti倒置光显微镜（日本尼康公司）。
2. 方 法
2.1 复方碘口腔喷雾药液配制及表征
2.1.1 药液配制
称取碘化钾0.5 g，溶解于少量纯化水中，再加入碘0.2 g，配制复方碘溶液。分别称取一定量Eudragit L-100、CaCl2，加入乙醇100 mL，搅拌溶解，置于喷瓶中，即为药液A；称取一定量海藻酸钠、CMC-Na和增塑剂甘油，并加入配制好的复方碘溶液，加入纯水100 mL溶解，置于喷瓶中即为药液B。
2.1.2 单因素考察
分别考察成膜材料Eudragit L-100 (25，37.5，50，62.5 mg/mL)、氯化钙 (2.5，5 ，7.5 ，10 mg/mL)、增塑剂甘油 (20，40，60 ，80 mg/mL)、海藻酸钠 (5，7.5，10，12.5 mg/mL) 以及CMC-Na (5，7.5，10，12.5 mg/mL)的用量，按“2.1.1”项下方法配制药液A，B。分别将药液A、B均匀喷涂于培养皿表面，37 ℃下记录成膜时间，对药液处方进行优化。
2.1.3 药液pH、喷雾状态、含量及稳定性考察
参照《中华人民共和国药典》（2020年版）四部制剂通则方法及文献方法[15−16]，测定药液A、药液B的pH。对药液A、药液B分别进行连续喷射，观察喷雾效果，记录喷雾状态。分别取适量药液A、药液B置于离心管中，以
4000 r/min 的转速离心15 min，观察药液A、药液B离心前后的溶液状态，评价其离心稳定性。分别取适量药液A、药液B，室温放置1周，测定其含量及喷雾状态，对其储存稳定性进行评价。2.2 原位膜制备、处方优化
按“2.1”项下优化的处方分别配制药液A和药液B，使用时先按压喷涂一定量的药液B，再喷涂一定量药液A至同一位置，于37 ℃保持一定时间，即可成膜。
以成膜时间和黏附性能为指标，对药液A和药液B比例进行优化。具体操作如下，分别考察不同药液B与药液A比例处方（1∶2，1∶1和2∶1）形成原位膜的成膜时间。将铺有药膜的平板竖直放置，每隔20 分钟 向药膜平板喷洒0.2 mL 水保湿，记录药膜从平板表面脱落时间，评价药膜的黏附性能。
2.3 复方碘口腔喷雾原位膜表征
2.3.1 原位膜形态、含量
采用最优处方制备复方碘口腔喷雾原位膜，记录体内外成膜时间，观察其外观及拉伸性能。冷冻干燥，扫描电镜下观察其微观结构。
复方碘口腔喷雾原位膜，干燥至恒重后取1 g 药膜于无水乙醇中溶解，超声后振荡4 h，过滤除去不溶性杂质，测定滤液的吸光度，计算复方碘喷雾原位膜中碘含量。
2.3.2 溶解性
按“2.2”项下方法制备复方碘口腔喷雾原位膜。干燥离心管称重，记录为m0，将制备好的膜剂置于干燥的离心管中，干燥至恒重，称量总重为m1。在离心管中加入人工模拟唾液（Na2HPO4 2.38 g，KH2PO4 0.19 g，NaCl2 10.8 g溶于
1000 mL蒸馏水中），室温下放置24 h 后过滤，将未溶解的残渣置于离心管中干燥至恒重，称量总重m2。膜的溶解性=[(m1−m2)/(m1−m0)]×100%。2.3.3 吸湿性
按“2.3”项下方法制备复方碘口腔喷雾原位膜。空白离心管干燥至恒重，记录为m0，将制备好的药膜置于离心管中，干燥至恒重，称量总重m1。再将干燥至恒重的药膜及离心管与饱和氯化钠溶液共同置于密封的容器内，室温下放置24 h后，称量膜和离心管的总重m2。膜的吸湿性=[(m2−m1)/(m1−m0)]×100%。
2.3.4 保湿性
参照文献[17]方法，测定复方碘喷雾原位膜的吸湿性能。按“2.3”项下方法制备复方碘口腔喷雾原位膜。将制备好的膜干燥至恒重，称量膜重M0。将干燥膜放入盛有饱和碳酸钾溶液的密闭容器中，室温下放置24 h 后，用滤纸吸去表面水分，称重m1。再将润湿后的膜放入装有无水氯化钙的密闭容器中，室温下继续放置24 h，称重记录为m2。膜的保湿性=[(m2−m0)/(m1−m0)]×100%。
2.4 体外释放
将碘甘油（含碘200 mg）包封于软胶囊制备碘甘油软胶囊剂，将复方碘喷雾原位膜（含碘200 mg）分别置于人工唾液50 mL中，37 ℃，170 r/min条件下持续振荡。在一定时间间隔内取出溶液1 mL，并加入等量的新鲜人工唾液。采用紫外分光光度法测定溶出液中的碘浓度，计算得到不同时间点释放的碘浓度。以时间为横坐标，碘累计释放率为纵坐标，绘制释放曲线。
2.5 生物相容性和细胞迁移能力评价
参照文献方法[18]，采用 MTT实验考察成膜材料的生物相容性。3T6细胞采用高糖DMEM为培养基，培养条件为37 ℃、5% CO2浓度下恒温孵育。具体操作为：取对数生长期的细胞接种于96孔板，每孔5 × 104 个细胞，孵育24 h 后吸去培养基，将空白口腔喷雾原位膜用无血清DMEM培养基溶解稀释后加入相应孔中，分别孵育24和48 h后，吸去培养液，每孔加入MTT (5 mg/mL) 溶液100 μL，继续孵育4 h 后将MTT吸出，每孔加DMSO 200 μL，37 ℃ 振摇5 min，酶标仪测定490 nm 波长处的吸收度。未给药的细胞作为空白对照组，给予无血清培养基进行孵育。
采用划痕实验考察空白膜和复方碘口腔喷雾原位膜对细胞迁移能力的影响。具体操作为：取对数生长期的3T6细胞接种于6孔板，每孔1×105 个细胞，孵育24 h。用200 μL移液枪枪头尖端垂直划伤细胞表面，用无血清DMEM培养基洗涤，采用倒置荧光显微镜拍摄细胞划痕情况。将空白和载药膜用无血清DMEM培养基溶解稀释后加入6孔板，分别孵育12 和24 h后，拍摄细胞迁移情况，计算细胞迁移率，评价成膜材料的促生长能力。
2.6 兔口腔溃疡修复评价
参照文献方法[19]，建立兔口腔溃疡模型。具体操作如下，兔麻醉后暴露兔唇处黏膜，用浸泡过50% 冰醋酸的湿棉花腐蚀黏膜60 s，即得兔口腔溃疡模型。兔子随机分为4组，分别为模型组（造模后在伤口处给予生理盐水）、空白药膜组、复方碘制剂组和含复方碘药膜组。各组每次给药后用手指将制剂按在溃疡区干预20 min，每隔1天处理伤口1次，连续处理7 d。一定时间间隔观察口腔溃疡的愈合情况。
2.7 统计分析
所有实验数据使用Graph Pad Prism 8.0软件进行统计分析，实验结果均表示为$\bar{x} $ ± s，采用One-Way ANOVA进行组间分析。P < 0.05代表组间差异具有统计学意义。
3. 结果与讨论
3.1 单因素实验处方用量考察
以成膜时间为指标，对药液A及药液B处方进行优化。如图1-A~1-D所示，分别为Eudragit L-100、氯化钙、甘油、海藻酸钠和CMC-Na用量对成膜时间的影响。结果显示，当Eudragit L-100、氯化钙、甘油、海藻酸钠、CMC-Na用量分别为50，7.5，60，12.5和12.5 mg/mL 时，相对应处方的成膜时间均为最短。但考察时发现，当海藻酸钠和CMC-Na用量为12.5 mg/mL 时，溶液的喷射状态是线状并非喷雾状，影响成膜性能，因此CMC-Na用量选用10 mg/mL。根据单因素试验得出的最优处方为：A液中, Eudragit L-100 50 mg/mL，CaCl2 7.5 mg/mL，甘油60 mg/mL，B液中，海藻酸钠12.5 mg/mL，CMC-Na 10 mg/mL。
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Figure 1. Film formation time of film spraysA: Eudragit L-100; B: Calcium chloride; C: Glycerin; D: Sodium alginate; E: CMC-Na3.2 复方碘口腔喷雾药液质量评价
按项“3.1”项下优化处方分别配制药液A及药液B，如图2-A、2-B。药液A为透明澄清的均一溶液，药液B为黄色澄清的均一溶液。药液A和药液B的pH平均值分别为6.21 ± 0.02和6.42 ± 0.03 。口腔黏膜的正常pH为6.2~7.6，可见喷膜剂药液的pH适宜。
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Figure 2. Quality evaluation of compound iodine oral sprayA: Character of liquid A; B: Character of liquid B; C: State of the solution before centrifugation; D: State of the solution after centrifugation药液A和药液B的连续喷射，喷雾状态结果显示药液A呈雾状喷出，药液B呈半雾状喷出，两者喷射状态均表现良好，不会在喷口处发生凝结。
离心稳定性实验结果如图2-C、2-D所示，药液A及药液B离心后均未发生分层，且外观均匀一致，呈透明溶液状态，表明药液A及药液B均具有良好的动力学稳定性。
分别对药液A、空白药液B和含碘药液B进行全波长扫描，确定碘在292 nm具有最大吸收，与文献报道一致[20]，且辅料无干扰。因此选择292 nm 波长为碘的测定波长，采用紫外分光光度法建立标准曲线，线性回归方程为：Y = 90.438 X−
0.1173 (R² = 0.996)，回收率为（98.62 ± 0.63）%，且回收率和精密度测试结果的RSD均小于2%，符合体外方法学的规定。药液B中碘的含量为（1.96 ± 0.01）mg/mL。药液A和药液B放置1周后喷射状态均保持良好，其中药液B的碘含量为（1.95 ± 0.02）mg/mL。
以上结果表明复方碘口腔喷雾药液，适于口腔黏膜使用，且具有良好的稳定性。
3.3 复方碘口腔喷雾原位膜表征
3.3.1 形态、含量及黏附性能
单因素实验优化结果如图3-A所示，药液B的比例逐渐升高时，成膜时间从102 s延长至143 s，当药液B与药液A比例为1∶2时，成膜最快，但此时药膜的黏附性最差，仅3.3 h 便发生脱落。可能是由于药液B涂层过薄，药液A与药液B接触混合较快且药液A过量造成药膜黏度不够所致。因此，综合成膜时间和药膜的黏附性，药液B和药液A的喷涂比例选择1∶1，此时，药液的成膜时间为110 s，且在湿润环境下保持近5 h 才发生脱落，具有较好的黏附性。
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Figure 3. Preparation and prescription optimization of drug filmA: Results of film formation time and adhesion properties (n=3); B: Plan view of drug film; C: Side view of drug film; D: SEM of the drug film采用最优处方制备的复方碘口腔喷雾原位膜如图3-B、3-C所示，药膜在体外的成膜时间为（118.3 ± 3.6） s，在体内的成膜时间为（133.3± 4.6） s；药膜呈厚度均一的平整黄色薄膜，具有良好的可拉伸性，适于口腔黏膜的应用需求。
以1∶1比例喷涂药液A和药液B形成复方碘口腔喷雾原位膜，冻干后在扫描电镜下观察其形态，如图3-D所示，药膜表面具有多孔洞结构，符合凝胶特性。
复方碘口腔喷雾原位膜中碘-碘化钾复合物的含量为（47.42 ± 0.39）mg/g，平均标示量在96.83%~99.61%，收率为（99.80 ± 0.47）%，且回收率和精密度结果RSD均小于2%，符合药典相关规定要求。
3.3.2 复方碘口腔喷雾原位膜质量评价
复方碘口腔喷雾原位膜的溶解性、吸湿性和保湿性实验结果显示，原位膜在人工唾液中24 h的溶解率为（87.31 ± 1.74）%，无大颗粒残渣，表明原位膜溶解性能较好，有利于在使用过程中药物缓慢释放且不会存在较大异物感。原位膜的吸湿性为（124.17 ± 7.13）%，表明原位膜具有较好的吸湿性，有利于吸收伤口渗出液。同时吸湿是保湿的基础，能够加快药物渗透入伤口内，从而发挥更好的药物疗效。原位膜的保湿性约为（26.85 ± 2.50）%，有利于保持伤口的润湿，促进愈合。
3.4 复方碘口腔喷雾原位膜体外释放
复方碘口腔喷雾原位膜在体外的释放情况如图4所示，在2 h 时，碘甘油软胶囊就已经几乎完全崩解释放出90%的制剂。而5 h 时，药膜中复方碘的释放仅为25%，18 h后释放趋于平稳，30 h 后药膜中复方碘在人工唾液中的累计释放率为90%。表明复方碘口腔喷雾原位膜具有缓释作用，有利于延长药物作用时间。
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Figure 4. In vitro release results of iodine-glycerol soft capsules andpharmaceutical films($\bar{x} $ ± s, n=3)3.5 生物相容性评价
成膜材料对3T6细胞作用不同时间后的细胞存活率如图5-A所示。结果显示，在考察的浓度范围内，细胞的存活率均大于95%，表明成膜材料具有良好的生物相容性。而相同浓度下，处理48 h的细胞存活率均高于处理24 h 的细胞，且细胞存活率大于100%，表明空白膜材料具有一定的促生长能力。细胞划痕实验结果如图4-B、4-C所示，空白膜和含药膜处理组的细胞迁移率显著高于对照组（P<0.00 1），且含药膜显示出更高的细胞迁移率。细胞实验结果表明复方碘原位膜有助于成纤维细胞迁移，具有促进创面愈合的潜力。
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Figure 5. Biocompatibility of free film($\bar{x} $ ± s, n=3)A: Cell viabilities of 3T6-Swiss albino treated with free film for 24 h and 48 h; B: Fibroblast migration behaviors; C: Fibroblast migration rates after treatment with free film**P < 0.01, ***P < 0.0013.6 兔口腔溃疡修复评价
各组实验动物口腔溃疡创面愈合情况如图6所示，与对照组相比，碘溶液组、空白膜组、复方碘药膜组在各时间点皆表现出促修复作用。且从第3 天开始，复方碘药膜组溃疡面积显著低于空白膜组及复方碘溶液组；在第5天 时，复方碘药膜组口腔溃疡创面已几乎愈合，创面修复面积显著低于复方碘溶液组（P<0.00 1）。结果表明：复方碘溶液在兔口腔黏膜显示出良好的原位成膜效果，空白膜材对溃疡创面具有一定的保护和促修复作用；复方碘药膜与复方碘溶液相比，具有更佳的促口腔溃疡促修复效果。
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Figure 6. Therapeutic effect of drug film on oral ulcer of rabbitA: Image of oral ulcer healing process in animal model; B: Quantitative results of oral ulcer healing process（$\bar{x} $ ± s, n=3）*P < 0.05, ***P < 0.001 vs drug film group4. 讨 论
用于制备凝胶膜剂的材料种类较多，在预实验中对成膜材料进行筛选，发现壳聚糖、卡波姆和明胶易呈凝胶状态，泊洛沙姆和乙基纤维素虽然呈溶液状态，但成膜性均较差，不能单独成膜，不适合作为喷膜剂材料。聚乙烯醇、羟丙基甲基纤维素、聚乙烯吡咯烷酮、聚丙烯酸树脂等材料的成膜性能较好，且溶解后均为溶液状态，能以喷雾的形式喷出，但聚乙烯醇、羧甲基纤维素钠及聚乙烯吡咯烷酮成膜时间过长。通过成膜性能、喷雾状态和成膜时间综合评价，选择以海藻酸、聚丙烯酸树脂和CMC-Na作为混合膜材成膜材料。
口腔膜剂给药方便，顺应性好，近年来受到广泛关注，美国已有80多个品种获批。我国目前有阿立哌唑口溶膜、昂丹司琼口溶膜等4款口溶膜获批上市，口腔膜剂具有巨大的市场前景。口腔溃疡患者数量大，但目前用于口腔溃疡的新型制剂研究匮乏。本研究开发了复方碘口腔喷雾原位贴膜，在溃疡处快速形成原位贴膜，对溃疡部位起到保护作用，使用方便，具有缓释作用，可有效促进创面修复。此外，在材料安全性评价中发现，空白膜材对细胞生长具有促进作用；在兔口腔溃疡治疗中，空白膜组也显示出对溃疡黏膜的促修复作用。推测这是由于材料中的海藻酸的促增殖作用，与文献报道一致[21−22]。因此本研究所制备的复方碘口腔喷雾原位贴膜可能通过抗菌及材料的促增殖的双重作用促进溃疡修复。相关机制将在后续实验中进行深入研究。
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[1] Xu XM, Kang D, Zhu XY, et al. Effect of celastrol based on IRAK4/ERK/p38 signaling pathway on proliferation and apoptosis of multiple myeloma cells[J]. J Exp Hematol (中国实验血液学杂志), 2022, 30(1): 175-182. [2] Zhong YL, Xu GJ, Huang S, et al. Celastrol induce apoptosis of human multiple myeloma cells involving inhibition of proteasome activity[J]. Eur J Pharmacol, 2019, 853: 184-192. doi: 10.1016/j.ejphar.2019.03.036
[3] Zhang XL, Li AP, Huan F, et al. Effects of celastrol on the proliferation and apoptosis of human leukemia cells HL-60 and Jurkat[J]. J China Pharm Univ (中国药科大学学报), 2015, 46(1): 89-93. [4] Wang X, Liu Q, Wu SS, et al. Identifying the effect of celastrol against ovarian cancer with network pharmacology and in vitro experiments[J]. Front Pharmacol, 2022, 13: 739478. doi: 10.3389/fphar.2022.739478
[5] Arisan ED, Rencuzogullari O, Coban M, et al. The role of the PI3K/AKT/mTOR signaling axis in the decision of the celastrol-induced cell death mechanism related to the lipid regulatory pathway in prostate cancer cells[J]. Phytochem Lett, 2020, 39: 73-83. doi: 10.1016/j.phytol.2020.06.007
[6] Tan QL, Liu ZQ, Gao XB, et al. Celastrol recruits UBE3A to recognize and degrade the DNA binding domain of steroid receptors[J]. Oncogene, 2022, 41(42): 4754-4767. doi: 10.1038/s41388-022-02467-8
[7] Zhan DM, Ni TY, Wang HB, et al. Celastrol inhibits the proliferation and decreases drug resistance of cisplatin- resistant gastric cancer SGC7901/DDP cells[J]. Anticancer Agents Med Chem, 2022, 22(2): 270-279. doi: 10.2174/1871520621666210528144006
[8] Chen GE, Zhu XY, Li JQ, et al. Celastrol inhibits lung cancer growth by triggering histone acetylation and acting synergically with HDAC inhibitors[J]. Pharmacol Res, 2022, 185: 106487. doi: 10.1016/j.phrs.2022.106487
[9] Zhang WX, Wu ZM, Qi HJ, et al. Celastrol upregulated ATG7 triggers autophagy via targeting Nur77 in colorectal cancer[J]. Phytomedicine, 2022, 104: 154280. doi: 10.1016/j.phymed.2022.154280
[10] Dai CH, Zhu LR, Wang Y, et al. Celastrol acts synergistically with afatinib to suppress non-small cell lung cancer cell proliferation by inducing paraptosis[J]. J Cell Physiol, 2021, 236(6): 4538-4554. doi: 10.1002/jcp.30172
[11] Liu M, Fan YM, Li DY, et al. Ferroptosis inducer erastin sensitizes NSCLC cells to celastrol through activation of the ROS-mitochondrial fission-mitophagy axis[J]. Mol Oncol, 2021, 15(8): 2084-2105. doi: 10.1002/1878-0261.12936
[12] Zhao ZC, Wang YM, Gong YY, et al. Celastrol elicits antitumor effects by inhibiting the STAT3 pathway through ROS accumulation in non-small cell lung cancer[J]. J Transl Med, 2022, 20(1): 525. doi: 10.1186/s12967-022-03741-9
[13] Lim HY, Ong PS, Wang LZ, et al. Celastrol in cancer therapy: recent developments, challenges and prospects[J]. Cancer Lett, 2021, 521: 252-267. doi: 10.1016/j.canlet.2021.08.030
[14] Lu Y, Liu Y, Zhou JW, et al. Biosynthesis, total synthesis, structural modifications, bioactivity, and mechanism of action of the quinone-methide triterpenoid celastrol[J]. Med Res Rev, 2021, 41(2): 1022-1060. doi: 10.1002/med.21751
[15] Sreeramulu S, Gande SL, Göbel M, et al. Molecular mechanism of inhibition of the human protein complex Hsp90-Cdc37, a kinome chaperone-cochaperone, by triterpene celastrol[J]. Angew Chem Int Ed, 2009, 48(32): 5853-5855. doi: 10.1002/anie.200900929
[16] Zhang T, Hamza A, Cao XH, et al. A novel Hsp90 inhibitor to disrupt Hsp90/Cdc37 complex against pancreatic cancer cells[J]. Mol Cancer Ther, 2008, 7(1): 162-170. doi: 10.1158/1535-7163.MCT-07-0484
[17] Xu MY, Li N, Zhao ZH, et al. Design, synthesis and antitumor evaluation of novel celastrol derivatives[J]. Eur J Med Chem, 2019, 174: 265-276. doi: 10.1016/j.ejmech.2019.04.050
[18] Li N, Xu MY, Wang B, et al. Discovery of novel celastrol derivatives as Hsp90-Cdc37 interaction disruptors with antitumor activity[J]. J Med Chem, 2019, 62(23): 10798-10815. doi: 10.1021/acs.jmedchem.9b01290
[19] Li N, Chen C, Zhu HT, et al. Discovery of novel celastrol-triazole derivatives with Hsp90-Cdc37 disruption to induce tumor cell apoptosis[J]. Bioorg Chem, 2021, 111: 104867. doi: 10.1016/j.bioorg.2021.104867
[20] Li N, Xu MY, Zhang LL, et al. Discovery of novel celastrol-imidazole derivatives with anticancer activity in vitro and in vivo[J]. J Med Chem, 2022, 65(6): 4578-4589. doi: 10.1021/acs.jmedchem.1c01293
[21] Jiang F, Wang HJ, Bao QC, et al. Optimization and biological evaluation of celastrol derivatives as Hsp90-Cdc37 interaction disruptors with improved druglike properties[J]. Bioorg Med Chem, 2016, 24(21): 5431-5439. doi: 10.1016/j.bmc.2016.08.070
[22] Hu XL, He QW, Long H, et al. Synthesis and biological evaluation of celastrol derivatives with improved cytotoxic selectivity and antitumor activities[J]. J Nat Prod, 2021, 84(7): 1954-1966. doi: 10.1021/acs.jnatprod.1c00262
[23] Fei Y, Zhang YH, Huang ZJ. Advance in selective/targeted nitric oxide releasing strategies[J]. Prog Pharm Sci(药学进展), 2019, 43(11): 804-816. [24] Li N, Xu MY, Bao N, et al. Discovery of novel NO-releasing celastrol derivatives with Hsp90 inhibition and cytotoxic activities[J]. Eur J Med Chem, 2018, 160: 1-8. doi: 10.1016/j.ejmech.2018.10.013
[25] Huang W, Zhang J, Luo L, et al. Nitric oxide and tumors: from small-molecule donor to combination therapy[J]. ACS Biomater Sci Eng, 2023, 9(1): 139-152. doi: 10.1021/acsbiomaterials.2c01247
[26] Fu XF, Mao Q, Zhang B, et al. Thiazolidinedione-based structure modification of celastrol provides thiazolidinedione-conjugated derivatives as potent agents against non-small-cell lung cancer cells through a mitochondria-mediated apoptotic pathway[J]. J Nat Prod, 2022, 85(4): 1147-1156. doi: 10.1021/acs.jnatprod.2c00104
[27] Huang LL, Zhang ZF, Zhang S, et al. Inhibitory action of celastrol on hypoxia-mediated angiogenesis and metastasis via the HIF-1α pathway[J]. Int J Mol Med, 2011, 27(3): 407-415.
[28] Shang FF, Wang JY, Xu Q, et al. Design, synthesis of novel celastrol derivatives and study on their antitumor growth through HIF-1α pathway[J]. Eur J Med Chem, 2021, 220: 113474. doi: 10.1016/j.ejmech.2021.113474
[29] Li XJ, Wang HM, Ding J, et al. Celastrol strongly inhibits proliferation, migration and cancer stem cell properties through suppression of Pin1 in ovarian cancer cells[J]. Eur J Pharmacol, 2019, 842: 146-156. doi: 10.1016/j.ejphar.2018.10.043
[30] Li XJ, Ding J, Li N, et al. Synthesis and biological evaluation of celastrol derivatives as anti-ovarian cancer stem cell agents[J]. Eur J Med Chem, 2019, 179: 667-679. doi: 10.1016/j.ejmech.2019.06.086
[31] Chen X, Zhao Y, Luo W, et al. Celastrol induces ROS-mediated apoptosis via directly targeting peroxiredoxin-2 in gastric cancer cells[J]. Theranostics, 2020, 10(22): 10290-10308. doi: 10.7150/thno.46728
[32] Lei ZC, Li N, Yu NR, et al. Design and synthesis of novel celastrol derivatives as potential anticancer agents against gastric cancer cells[J]. J Nat Prod, 2022, 85(5): 1282-1293. doi: 10.1021/acs.jnatprod.1c01236
[33] Xu SW, Law BYK, Qu SLQ, et al. SERCA and P-glycoprotein inhibition and ATP depletion are necessary for celastrol-induced autophagic cell death and collateral sensitivity in multidrug-resistant tumor cells[J]. Pharmacol Res, 2020, 153: 104660. doi: 10.1016/j.phrs.2020.104660
[34] Coghi P, Ng JPL, Kadioglu O, et al. Synthesis, computational docking and biological evaluation of celastrol derivatives as dual inhibitors of SERCA and P-glycoprotein in cancer therapy[J]. Eur J Med Chem, 2021, 224: 113676. doi: 10.1016/j.ejmech.2021.113676
[35] Xu H, Zhao HF, Ding CY, et al. Celastrol suppresses colorectal cancer via covalent targeting peroxiredoxin 1[J]. Signal Transduct Target Ther, 2023, 8(1): 51. doi: 10.1038/s41392-022-01231-4
[36] Feng Y, Wang WB, Zhang Y, et al. Synthesis and biological evaluation of celastrol derivatives as potential anti-glioma agents by activating RIP1/RIP3/MLKL pathway to induce necroptosis[J]. Eur J Med Chem, 2022, 229: 114070. doi: 10.1016/j.ejmech.2021.114070
[37] Figueiredo SAC, Salvador JAR, Cortés R, et al. Novel celastrol derivatives with improved selectivity and enhanced antitumour activity: design, synthesis and biological evaluation[J]. Eur J Med Chem, 2017, 138: 422-437. doi: 10.1016/j.ejmech.2017.06.029
[38] Li N, Li CB, Zhang J, et al. Discovery of semisynthetic celastrol derivatives exhibiting potent anti-ovarian cancer stem cell activity and STAT3 inhibition[J]. Chem Biol Interact, 2022, 366: 110172. doi: 10.1016/j.cbi.2022.110172
[39] Feng Y, Zhang B, Lv JL, et al. Scaffold hopping of celastrol provides derivatives containing pepper ring, pyrazine and oxazole substructures as potent autophagy inducers against breast cancer cell line MCF-7[J]. Eur J Med Chem, 2022, 234: 114254. doi: 10.1016/j.ejmech.2022.114254
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