摘要
以ALK5抑制剂LY-3200882作为先导化合物,利用生物电子等排和构象限制等药物设计策略,结合分子对接技术,设计并合成了10个结构新颖的化合物,其结构
关键词
转化生长因子家族配体包括TGF-βs、抑制素、激活素、骨形成蛋白、生长和分化因子,在细胞增殖、分化、凋亡、迁移、细胞外基质表达和免疫应答等众多过程中都发挥着重要作
以往研究报道,在乳腺癌、结直肠癌、肝细胞癌等多种肿瘤类型中,TGF-β及其信号通路高表
目前共有6个ALK5小分子抑制剂进入临床研究阶段,其中公开结构的有3个(

Figure 1 ALK5 inhibitors in clinical phase
为了寻找新型ALK5激酶抑制剂,本研究选取LY-3200882作为先导化合物,通过分析LY-3200882与ALK5蛋白的作用方式(

Figure 2 Proposed binding mode of LY-3200882 (pdb code: 2wou)
根据以上分析,对活性起关键作用的母核C区予以保留,利用生物电子等排、构象限制等策略,结合分子对接技术,设计了两类结构新颖的化合物(

Figure 3 Molecular design based on the structure of LY-3200882
目标化合物的合成如路线1所示。化合物1与2-氯吡啶-4-醇在DMF中用碳酸钾为碱反应得到化合物2,再与DMF-DMA反应形成化合物3,经水合肼关环生成化合物4,随后与烷基化试剂环丙基硼酸在Chan-Lam偶联条件下反应得到化合物5,最后和相应的胺经Buchwald-Hartwig偶联得到目标化合物。

Scheme 1 Synthetic route of the target compounds
Bruker Avance Ⅲ HD 400 MHz型核磁共振仪(德国Bruker公司,TMS为内标); Q Exactive高分辨质谱仪(美国Thermo公司); MP70型熔点仪(瑞士Mettler-Toledo公司);Waters e2695型高效液相色谱仪(美国Waters公司);所用化学试剂均为市售化学纯或分析纯产品,一般均不经纯化处理直接使用。
ALK5激酶(Carna公司,批号 09-141);Bright-Glo Luciferase assay system(美国Promega公司);Luc-Smad2/3-NIH3T3小鼠成纤维细胞,由中国药科大学徐晓军研究员实验室馈赠。
雄性BALB/c小鼠,体重(18~22 g),购自常州卡文斯实验动物有限公司,许可证号:SCXK(苏)2016-0010。
2-((2-氯吡啶-4-基)氧基)-1-(四氢-2H-吡喃-4-基)乙-1-酮(2)
氩气保护下,将化合物1 (1.45 g, 7.0 mmol)的无水DMF(5 mL)溶液加入到2-氯-4羟基吡啶(0.91 g, 7.0 mmol),碳酸钾(1.48 g, 14.0 mmol)和无水DMF(20 mL)的混合物中,升温至90 ℃反应2 h。降至室温,加入饱和食盐水,乙酸乙酯萃取,无水Na2SO4干燥,减压除去溶剂得红色油状物1.47 g,收率82%,ESI-MS(m/z):257.1 [M+H
(E)-2-((2-氯吡啶-4-基)氧基)-3-(二甲基氨基)-1-(四氢-2H-吡喃-4-基)丙-2-烯-1-酮(3)
将化合物2(1.47 g,5.74 mmol),1,1-二甲氧基三甲胺(3.24 mL,24.4 mmol)加热至100 ℃回流反应2 h。冷却,加入乙酸乙酯,饱和食盐水洗涤,无水Na2SO4干燥,旋干溶剂得棕色油状物1.78 g,收率99%,ESI-MS(m/z):312.0 [M+H
2-氯-4-((3-(四氢-2H-吡喃-4-基)-1H-吡唑-4-基)氧基)吡啶(4)
将化合物3(1.78 g,5.74 mmol)溶于醋酸溶液60 mL中,冰浴下用恒压滴液漏斗加入水合肼(3.0 g,60.0 mmol),室温反应过夜。加入乙酸乙酯,饱和碳酸氢钠溶液洗涤,无水Na2SO4干燥,减压除去溶剂得棕色粗品1.05 g,无需纯化,直接用于下一步,ESI-MS (m/z):281.1[M+H
2-氯-4-((1-环丙基-3-(四氢-2H-吡喃-4-基)-1H-吡唑-4-基)氧基)吡啶(5)
将2,2′-联吡啶(0.70 g,4.4 mmol),乙酸铜(0.80 g,4.4 mmol)和1,2-二氯乙烷(10 mL)于75 ℃反应25 min,冷却至室温。加入化合物4(1.12 g,4.0 mmol),环丙基硼酸(0.69 g,8.0 mmol)和碳酸钠(0.85 g,8.0 mmol),氧气氛围下,75 ℃反应2 h。冷却至室温,加入饱和食盐水,二氯甲烷萃取,无水Na2SO4干燥,减压除去溶剂,柱色谱纯化得黄色固体1.10 g,收率86%;mp:112~114 ℃。ESI-MS(m/z):320.1[M+H
4-((1-环丙基-3-(四氢-2H-吡喃-4-基)-1H-吡唑-4-基)氧基)-N-(2-(三氟甲基)吡啶-4-基)吡啶-2-胺(A1)
氩气保护下,将化合物5(192 mg,0.60 mmol),2-三氟甲基-4-氨基吡啶(119 mg, 0.78 mmol), 4,5-双二苯基膦-9,9-二甲基氧杂蒽(69 mg, 0.12 mmol),醋酸钯(13.5 mg,0.06 mmol),碳酸铯 (293 mg,0.90 mmol)溶于1,4-二氧六环15 mL,加热至100 ℃反应过夜。冷却,加入饱和食盐水,二氯甲烷萃取,无水Na2SO4干燥,旋干溶剂,制备HPLC纯化得白色固体85 mg,收率31%;mp:168~170 ℃;纯度96.7%
4-(4-((4-((1-环丙基-3-(四氢-2H-吡喃-4-基)-1H-吡唑-4-基)氧基)吡啶-2-基)氨基)吡啶-2-基)-2-甲基丁-3-炔-2-醇(A2)
制备方法同化合物A1,将2-三氟甲基-4-氨基吡啶换成4-(4-氨基吡啶-2-基)-2-甲基丁-3-炔-2-醇,得白色固体25 mg,收率18%;mp: 110~112 ℃;纯度92.8%
N-(2-(1H-吡唑-4-基)吡啶-4-基)-4-((1-环丙基-3-(四氢-2H-吡喃-4-基)-1H-吡唑-4-基基)氧基)吡啶-2-胺(A3)
制备方法同化合物A1,将2-三氟甲基-4-氨基吡啶换成2-(1H-吡唑-4-基)吡啶-4-胺,得淡黄色固体65 mg,收率33%;mp: 111~113 ℃;纯度97.7%
2-(2-(4-((4-((1-环丙基-3-(四氢-2H-吡喃-4-基)-1H-吡唑-4-基)氧基)吡啶-2-基)氨基)吡啶-2-基)苯基)丙-2-醇(A4)
制备方法同化合物A1,将2-三氟甲基-4-氨基吡啶换成2-(2-(4-氨基吡啶-2-基)苯基)丙-2-醇,得白色固体117 mg,收率67%;mp: 195~197 ℃;纯度94.8%
4-(4-((4-((1-环丙基-3-(四氢-2H-吡喃-4-基)-1H-吡唑-4-基)氧基)吡啶-2-基)氨基)吡啶-2-基)四氢-2H-吡喃-4-醇(A5)
制备方法同化合物A1,将2-三氟甲基-4-氨基吡啶换成4-(4-氨基吡啶-2-基)四氢-2H-吡喃-4-醇,得白色固体85 mg,收率28%;mp: 92~94 ℃;纯度96.6%
4-(4-((4-((1-环丙基-3-(4,4-二氟环己基)-1H-吡唑-4-基)氧基)吡啶-2-基)氨基)吡啶-2-基)四氢-2H-吡喃-4-醇(B1)
制备方法同化合物A5,将2-溴-1-(四氢-2H-吡喃-4-基)乙-1-酮换成2-溴-1-(4,4-二氟环己基)乙烷-1-酮,得白色固体170 mg,收率26%;mp:56~58 ℃;纯度96.9%
4-(4-((4-((3-(3- 唑环[3.1.0]己-6-基)-1-环丙基-1H-吡唑-4-基)氧基)吡啶-2-基)胺基)吡啶-2-基)四氢-2H-吡喃-4-醇(B2)
制备方法同化合物A5,将2-溴-1-(四氢-2H-吡喃-4-基)乙-1-酮换成1-(3-氧杂环[3.1.0]己烷-6-基)-2-溴乙烷-1-酮,得白色固体135 mg,收率14%;mp: 63~ 65 ℃;纯度98.2%
4-(4-((4-((1-环丙基-3-苯基-1H-吡唑-4-基)氧基)吡啶-2-基)氨基)吡啶-2-基)四氢-2H-吡喃-4-醇(B3)
制备方法同化合物A5,将2-溴-1-(四氢-2H-吡喃-4-基)乙-1-酮换成2-溴-1-苯乙烷-1-酮,得白色固体65 mg,收率21%;mp: 137~139 ℃;纯度99.6%
4-(4-((4-((1-环丙基-3-(2-氟苯基)-1H-吡唑-4-基)氧基)吡啶-2-基)氨基)吡啶-2-基)四氢-2H-吡喃-4-醇(B4)
制备方法同化合物A5,将2-溴-1-(四氢-2H-吡喃-4-基)乙-1-酮换成2-溴-1-(2-氟苯基),得白色固体32 mg,收率22%;mp: 67~69 ℃;纯度93.6%;
4-(4-((4-((1-环丙基-3-(3-氟苯基)-1H-吡唑-4-基)氧基)吡啶-2-基)氨基)吡啶-2-基)四氢-2H-吡喃-4-醇(B5)
制备方法同化合物A5,将2-溴-1-(四氢-2H-吡喃-4-基)乙-1-酮换成2-溴-1-(3-氟苯基),得白色固体28 mg,收率19%;mp: 117~119 ℃;纯度99.8%
将化合物溶解于指示剂量的DMSO中(从 10 μmol/L按3倍稀释),用Echo转移化合物100 nL到384孔反应板中。将ALK5激酶加入1倍激酶缓冲液(40 mmol/L Tris,pH 7.5,0.10% BSA,20 mmol/L MgCl2,1 mmol/L DTT)中,形成2倍酶溶液,向384孔反应板中加入2.5 µL,室温孵育10 min。将FAM标记的多肽和ATP加入1倍激酶缓冲液,形成2倍底物溶液,并转移2.5 µL至384孔反应板,于28 ℃孵育120 min。转移反应液5 μL到一块新的384孔板反应孔中,加入ADP-Glo试剂5 μL终止反应,于28 ℃孵育120 min。转移激酶检测试剂10 μL到反应孔中,振荡1 min,室温静置30 min。在Envision上读取发光值。
Luc-Smad2/3-NIH3T3细胞于10 cm培养皿中正常培养至汇合度达90%,消化后收集至15 mL离心管中,1 000 r/min离心5 min后,去除上清液,用培养基1 mL重悬后,稀释10倍计数,根据计数后的结果稀释细胞,将每孔4 000个细胞数传入96孔板中(每孔加入重悬细胞100 μL)。称取化合物2 mg,使用DMSO配制成4 mmol/L母液,用2% FBS培养基稀释,加入1×化合物溶液100 μL,使其终浓度分别为20 000,5 000,1 250,312.5,78.125,19.53,4.88,1.22 nmol/L,每孔TGF β1终浓度为4 ng/mL,与化合物一起用2% FBS培养基稀释。然后移去细胞上清液,每孔加入Glo Lysis Buffer 100 μL,缓慢摇晃使其均匀溶解细胞,室温裂解5 min。每孔加入Bright-glo luciferase assay system 100 μL,室温孵育5 min,振荡2 min,将上清液180 μL转入白底96孔板,检测化学发光信号。
单次口服给药(po)组:10 mg/kg,0.2 mL/10 g;单次尾静脉注射给药(iv)组:1 mg/kg,0.1 mL/10 g,n=3;po或给药后于5、15、30 min,1、2、6、10、24 h自眼眶静脉丛采血于肝素化EP管(0.6 mL)中,暂置于碎冰上。然后以8 000 r/min离心5 min,转移上层血浆15 μL,加甲醇-乙腈(1∶1)150 μL沉淀(含 1 ng/mL邻甲苯海拉明),振荡3 min,4 500 r/min,离心5 min,取上清液(容器:2 mL深孔板) 50 μL,加入稀释剂(甲醇-水,1∶1) 500 μL,振荡3 min,4 500 r/min离心5 min,转移上清液200 μL用LC-MS/MS进样分析。根据上述步骤所得血药浓度数据绘制血药浓度-时间曲线图,用WinNonlin软件求算药代动力学参数。
目标化合物的体外活性结果如
ND: Not determined
通过固定四氢吡喃醇,利用生物电子等排,将B区四氢吡喃环替换成二氟环己烷(B1),相比于阳性药,抑制活性显著提高(IC50 = 3.8 nmol/L),可能是因为二氟甲基的体积较氧原子略大,疏水作用的加强导致抑制活性提高。引入桥环结构(B2)活性与阳性药相当,表明四氢吡喃环上位阻对活性影响相对较小。当用苯环替换四氢吡喃环时(B3),抑制活性得到显著改善,可能苯环与结合口袋中某些氨基酸残基存在π-π堆积作用,使得结合力增强。此外,苯环上取代基及其位置对活性有一定影响,引入氟原子可进一步提高活性,且氟位于邻位时(B4)抑制活性更强(IC50 = 1.4 nmol/L),具有阳性药31倍的优势。在细胞活性测试中,化合物B4对NIH3T3细胞中TGFβ-ALK5-SMAD2/3信号通路表现出最佳的抑制活性(IC50 = 14.2 nmol/L)。基于化合物B4良好的体外抑制活性,对其药代动力学性质做进一步考察。

药代动力学的评价结果如
a Compound in a solution of 20% PG, 5% EtOH, 5% solutol and 70% water
为了进一步说明化合物的构效关系,本研究使用分子对接方法研究了化合物B4与靶蛋白ALK5在活性位点的结合模式(pdb: 2wou)。通过

Figure 4 Proposed binding mode of B4 (purple) and overlaid with LY-3200882 (green)
本研究通过分析LY-3200882与ALK5的结合模式,保留对活性起关键作用的母核区域,利用生物电子等排和构象限制等策略,设计并合成了10个目标化合物。通过两轮优化得到化合物B4,不仅表现出显著的体外抑制活性,而且具备良好的药代动力学性质,具有进一步开发的潜在价值。
同等贡献声明
许涛与王小伟为共同第一作者
XU Tao and WANG Xiaowei contributed equally to this work
参考文献
Morikawa M,Derynck R, Miyazono K. TGF-β and the TGF-β family: context-dependent roles in cell and tissue physiology[J]. Cold Spring Harb Perspect Biol, 2016, 8(5):a021873. [百度学术]
Horbelt D, Denkis A, Knaus P. A portrait of transforming growth factor β superfamily signalling: background matters[J]. Int J Biochem Cell Biol, 2012, 44(3):469-474. [百度学术]
Xiaoling T, Wencai G, Lingyun Z, et al. Physical interaction of STAT1 isoforms with TGF-β receptors leads to functional crosstalk between two signaling pathways in epithelial ovarian cancer[J]. J Exp Clin Canc Res, 2018, 37(1):103. [百度学术]
Heldin CH, Moustakas A. Signaling receptors for TGF-β family members[J]. Cold Spring Harb Perspect Biol, 2016, 8(8):a022053. [百度学术]
Padua D, MassaguéJoan. Roles of TGFβ in metastasis[J]. Cell Res, 2016, 19(1):89-102. [百度学术]
Pickup M, Novitskiy S, Moses HL. The roles of TGFβ in the tumour microenvironment[J]. Nat Rev Cancer, 2013, 13(11):788-799. [百度学术]
Batlle E, Massague J. Transforming growth factor-beta signaling in immunity and cancer[J]. Immunity, 2019, 50(4):924-940. [百度学术]
Pei H, Parthasarathy S, Joseph S, et al. LY3200882, a novel, highly selective TGFβRI small molecule inhibitor[J]. Cancer Res, 2017, 77:955. [百度学术]
Goldberg FW , Ward RA , Powell SJ , et al. Rapid generation of a high quality lead for transforming growth factor-β (TGF-β) type I receptor (ALK5)[J]. J Med Chem, 2009, 52(23):7901-7905. [百度学术]