摘要
研究鹿瓜多肽注射剂的新鲜度、高相对分子质量物质、多肽含量测定、溶血与凝聚及生物学活性等指标,为鹿瓜多肽注射剂质量标准修订提供理论参考。首先,对影响终产品新鲜度的因素包括生物胺含量、黄曲霉毒素、甜瓜子原料的酸价和过氧化值等进行考察。建立丹磺酰氯柱前衍生-HPLC法测定鹿瓜多肽注射剂中8种生物胺的含量,方法学验证结果显示该法专属性、精密度、线性关系以及回收率等均良好,适用于鹿瓜多肽注射剂中生物胺类成分的检测,样品测定结果显示个别样品中检出较高浓度的尸胺;黄曲霉毒素、甜瓜子原料的酸价和过氧化值测定结果表明:部分生产原料甜瓜子存在霉变、酸败等问题,提示含动植物源性成分的多组分生化药质量标准应在新鲜度方面加强控制。其次,改进了鹿瓜多肽注射剂质量标准中高相对分子质量物质和多肽含量测定的方法。采用 Tricine-SDS-PAGE 电泳法代替凝胶色谱法测定高相对分子质量物质,提高了测定的准确性;采用试剂盒法代替福林酚法测定多肽含量,该法操作简便、专属性更强,可适用于高通量样品测定。最后,对鹿瓜多肽注射剂质量标准中缺失的溶血与凝聚、生物学活性测定项目进行了研究。研究结果显示,样品均无溶血与凝聚现象;鹿瓜多肽注射剂对单核巨噬细胞THP-1具有增殖抑制作用,且所检测样品的体外抗炎效果具有一定差异。优化后的检测方法更适用于鹿瓜多肽注射剂的质量检测,并为多组分生化药质量控制奠定了基础。
鹿瓜多肽注射剂包括鹿瓜多肽注射液和注射用鹿瓜多肽,属于多组分生化药。鹿瓜多肽注射剂是从动物梅花鹿骨骼和中草药甜瓜子中分离、提取制成的灭菌水溶液或无菌冻干品。无菌冻干品的辅料为甘露醇或右旋糖酐40。鹿瓜多肽注射剂的主要成分鹿骨提取物中含有骨诱导多肽、多种游离氨基酸,以及钙、磷等活性因子,可以诱导成骨细胞的转化,促进骨折愈合;甜瓜子提取物富含多肽、不饱和脂肪酸,可以降低毛细血管通透、减少炎性渗出,有效缓解各种炎性症状。鹿瓜多肽注射剂临床上主要用于风湿、类风湿关节炎、强直性脊柱炎、各种类型骨折、创伤修复
目前鹿瓜多肽注射剂在我国共有3家企业生产,7个国药准字批准文号。现行标准包括:国家药品标准 WS1-XG-002-2002-2005、试行标准 YBH12682005(8 mg)/ YBH12432006(16 mg)/ YBH13522006(24 mg)、试行标准 YBH13342005 及补充申请批件 2006B01192。历版《中华人民共和国药典》及国外药典均未收载鹿瓜多肽注射剂。
国家药品监督管理局将鹿瓜多肽注射剂列入 2019 年国家药品评价性抽验计划,隶属于多组分生化药专项。此次国家药品监督管理局药品监督管理司共抽样鹿瓜多肽注射剂 69 批次,其中注射用鹿瓜多肽有4、8、16和24 mg 4种规格;鹿瓜多肽注射液有2 mL∶4 mg和4 mL∶8 mg两种规格。
在对生产企业进行实地调研及样品法定检验时发现了如下问题:(1) 现行标准暂无样品新鲜度质控项目。现场调研时发现甜瓜子原料存在霉变、酸败的现象,中间提取液存在反复冻融的情况,且企业未对生物胺、真菌毒素、酸价及过氧化值等影响产品新鲜度的指标进行控制;(2)现行质量标准 WS1-XG-002-2002-2005 未对高相对分子质量物质进行控制;其余质量标准均采用凝胶色谱法测定高相对分子质量物质。经法定检验发现,由于制剂成分非常复杂,色谱流出峰难以有效分离,对积分和定量都造成一定困难,导致测定结果不准确;(3)现行标准缺失溶血与凝聚、生物学活性测定项目,无法从安全性、有效性方面控制产品质量;(4)现行标准采用福林酚法测定多肽含量,该法存在辅料干扰、对照品和供试品溶解稀释所用溶剂不一致的情况。基于上述问题,本研究开展一系列探索,包括建立新鲜度质量属性的检测项目、优化高相对分子质量物质和多肽含量测定检测方法、考察溶血与凝聚及生物学活性测定,从安全性、有效性角度系统研究鹿瓜多肽注射剂的质量状况,以期为鹿瓜多肽注射剂质量标准的完善奠定理论基础。
8种生物胺对照品,包括:组胺、酪胺、尸胺、腐胺、2-苯乙胺、色胺、精胺、亚精胺(纯度均大于 98.0%,美国Sigma-Aldrich公司);黄曲霉毒素混合对照品溶液(批号LC01086,含黄曲霉毒素 B1、B2、G1、G2质量浓度分别为:0.961、0.280、0.903、0.296 μg/mL,美国Supelco公司);黄曲霉毒素免疫亲和柱(AflaTest,1 mL,美国Vicam公司);核糖核酸酶A(批号E1624067,上海阿拉丁生化科技股份有限公司);超低相对分子质量蛋白质Marker(3.3-20.1 kD,北京索莱宝科技有限公司);Pierce Quantitative Colorimetric Peptide Assay多肽含量测定试剂盒(批号UD286404C,美国 Thermo Fisher公司);牛血清白蛋白(批号SLBC3968V,美国Sigma-Aldrich公司);RPMI 1640培养基(批号0022919,以色列Biological Industries公司);胎牛血清(FBS)(批号1913445,以色列Biological Industries公司);CCK-8试剂盒(批号NY652,日本同仁化学研究所);乙腈、甲醇为色谱纯(德国Merck公司);实验用水为Millipore超纯水;其余试剂均为市售分析纯。鹿瓜多肽注射剂均为2019年国家药品抽验计划样品(69批,来自3个生产企业);鹿瓜多肽中间提取液、甜瓜子原料均由3个生产企业提供。
Waters e2695高效液相色谱系统,配2489 UV/Vis紫外检测器、Aura Industries光化学衍生器(254 nm紫外灯衍生光源)及2475 FLR荧光检测器(美国Waters公司);T50自动电位滴定仪、XS205电子天平(瑞士Mettler Toledo公司);Mini-Protean Tetra垂直电泳系统及Universal Hood Ⅱ凝胶成像系统(美国Bio-Rad公司);Varioskan Flash多功能酶标仪、HERAcell 240i二氧化碳培养箱(美国Thermo Fisher公司);CF16RXII冷冻离心机(日本Hitachi公司);R-215专业型旋转蒸发仪(瑞士Buchi公司); ECLIPSE TS100-F倒置显微镜(日本Nikon公司); SpectraMax M2多功能酶标仪(美国Molecular Devices公司);纯化水仪(美国Millipore公司)。
生物胺是食品或药材新鲜程度和被微生物污染程度的标
对照品溶液:取8种生物胺对照品各适量,精密称定,分别置10 mL量瓶中,用0.1 mol/L盐酸溶液制成每1 mL中约含各生物胺2.5 mg的溶液,作为对照品贮备液。分别量取各生物胺对照品贮备液1.0 mL,置同一25 mL量瓶中,用0.1 mol/L盐酸溶液稀释至刻度,摇匀,制得生物胺混合对照品溶液(0.1 mg/mL);精密量取此混合对照品溶液0.01,0.10,0.50,1.00,2.00,5.00 mL,分别置10 mL量瓶中,用0.1 mol/L盐酸溶液稀释至刻度,摇匀,制得0.10,1.00,5.00,10.00,20.00,50.00 μg/mL的系列混合对照品溶液。
供试品溶液:取鹿瓜多肽注射液(A 企业),作为供试品溶液;取注射用鹿瓜多肽(B、C企业),用 0.1 mol/L 盐酸溶液溶解并稀释制成2 mg/mL的溶液(以多肽计),作为供试品溶液。
空白溶剂:取 0.1 mol/L 盐酸溶液,作为空白溶剂。
衍生剂溶液:精密称取丹磺酰氯适量,用丙酮制成10 mg/mL的溶液,作为衍生剂溶液。
精密量取上述系列混合对照品溶液、供试品溶液和空白溶剂各0.5 mL,依次加入衍生剂溶液1 mL、饱和碳酸氢钠溶液0.3 mL与氢氧化钠溶液(2 mol/L)0.2 mL,60 ℃水浴避光反应30 min,取出加入氨水(1∶1)0.2 mL,室温避光反应 30 min,加乙酸乙酯5 mL提取3次,合并提取液,40 ℃水浴氮气吹干,加甲醇1.0 mL溶解残留物,用0.22 μm有机滤膜滤过,进行HPLC测定。
采用Inertsil ODS-3色谱柱(250 mm×4.6 mm, 5 μm),以水(A)-90%乙腈(B)为流动相,梯度洗脱(0~30 min,50% B→100% B;30~38.5 min,100% B;38.5~39 min,100% B→50% B;39~43 min,50% B),检测波长为 254 nm,柱温30 ℃,进样量30 μL。
精密量取衍生后的系列混合对照品溶液各30 μL进样分析,以8种生物胺质量浓度(X)为横坐标,各生物胺的峰面积(Y)为纵坐标建立标准曲线,考察各生物胺的线性关系。取上述衍生后的混合对照品溶液用甲醇适当稀释,以信噪比S/N=10和S/N=3分别作为定量限和检测限。
取批号为220190106的供试品溶液0.25 mL,共制9份,分成3组。分别精密加入1.00、5.00、10.00 μg/mL混合对照品溶液0.25 mL,每个质量浓度重复3份,分别衍生后进样分析。
按照《中华人民共和国药典》(2015年版)四部通则2351黄曲霉毒素测定法指导原则及相关的文
参考食品安全国家标准《食品中酸价的测定(GB 5009.229-2016)》及《食品中过氧化值的测定(GB 5009.227-2016)》,对甜瓜子原料(A企业3批,B企业5批)的酸价、过氧化值进行检测。首先将甜瓜子粉碎,用水搅匀并浸泡2~3 h;再加入石油醚,浸泡过夜;经装有无水硫酸钠的滤纸过滤,取滤液置圆底烧瓶中,在40 ℃水浴中用旋转蒸发仪蒸干石油醚,残留物即为待测油脂;用滴定法测定待测油脂的酸价和过氧化值。酸价测定采用乙醇制氢氧化钾滴定液(0.1 mol/L)进行电位滴定;过氧化值测定采用硫代硫酸钠滴定液(0.002 mol/L)进行电位滴定。
参考相关文
取家兔耳动脉血,按《中华人民共和国药典》(2015年版)四部通则1148溶血与凝聚检查法制备 2%红细胞悬液,69批鹿瓜多肽注射剂均按照 2 mg/mL多肽含量制备供试品溶液,同时设置阴性对照组(氯化钠注射液)和阳性对照组(灭菌注射用水)。采用直接观察法(试管内肉眼观察)考察受试物管中的溶液在3 h内是否发生溶血和凝聚反应,直接观察法结束后,将供试品和对照组均以2 000 r/min离心5 min,用酶标仪测定上清液在545 nm波长处的吸收度。每管加样3个复孔,求其平均值。按公式[溶血率=(供试品管吸收度-阴性对照管吸收度)/(阳性对照管吸收度-阴性对照管吸收度)×100%]计算溶血率,以溶血率大于5%表示有溶血发生。
多肽含量测定试剂盒基于《中华人民共和国药典》(2015年版)四部通则0731蛋白质含量测定第四法(BCA 法)测定原理,对照品贮备液为牛血清白蛋白溶液,用水配制成下列质量浓度标准溶液:500、250、125、62.5、31.25、15.625和0 μg/mL,按试剂盒使用说明书操作并用酶标仪在480 nm波长处测定吸收度,同时绘制标准曲线。鹿瓜多肽注射剂用水溶解并稀释制成250 μg/mL(以多肽计)的溶液,作为供试品溶液。将供试品溶液的平均吸收度代入上述对照品标准曲线中,计算出供试品溶液的多肽含量。
针对鹿瓜多肽注射剂的抗炎作用,并参考相关文
取空白溶剂、混合对照品溶液(10 μg/mL)和供试品溶液分别衍生后进样分析。结果表明,该方法专属性良好,空白溶剂在目标峰出峰位置无干扰,各生物胺色谱峰理论塔板数均大于10 000,各相邻峰的分离度均大于 1.5,色谱图见

Figure 1 HPLC chromatogram of blank solution (A), reference solution (B) and sample test solution (C) of Cervus and Cucumis polypeptide injection
1: Tryptamine; 2: 2-Phenylethylamine; 3: Putrescine; 4: Cadaverine; 5: Histamine; 6: Tyramine; 7: Spermidine; 8: Spermine
8种生物胺均在 0.10~50.00 μg/mL范围内线性关系良好;各生物胺的定量限在0.031~0.112 μg/mL之间;检测限在0.009~0.034 μg/mL之间,结果见
结果显示8种生物胺的平均回收率在90.71%~97.88%之间,RSD在0.55%~2.04%之间,均符合《中华人民共和国药典》要求,结果见
结果组胺、色胺、2-苯乙胺、腐胺、酪胺、尸胺、亚精胺、精胺8种生物胺的衍生物峰面积RSD(n=6,%)分别为0.73、0.21、0.47、0.47、1.01、1.32、0.23、0.81,表明色谱系统精密度良好。
结果显示,A企业和C企业的鹿瓜多肽注射剂检出组胺、2-苯乙胺、腐胺、尸胺等生物胺,但含量均较低(0.004%~0.038%,占多肽标示量的百分比计);而B企业的10批鹿瓜多肽注射剂均检出较高浓度的尸胺,范围从0.265%~0.333%。各样品检测结果见
n.a.means that the detection limit has not been reached
选取3个企业共30批鹿瓜多肽注射剂和8批甜瓜子提取液进行了黄曲霉毒素的测定,结果上述38批样品均未检出黄曲霉毒素B1、B2、G1和G2(黄曲霉毒素B1、B2、G1、G2的检测限分别为0.012、0.003 4、0.011、0.003 6 ng/mL)。
通过对两个企业共8批甜瓜子原料进行测定,过氧化值测定结果在0.004~0.014 g/100 g之间,低于国标GB 19300-2014的限值0.40 g/100 g。而酸价结果差异较大,在1.92~7.26 mg/g之间(以KOH计),其中A企业批号为20180901的甜瓜子原料酸价为7.26 mg/g,B企业批号为1901002和1902003的甜瓜子原料酸价分别为3.14和3.06 mg/g,均超过国标GB 19300-2014的限值3.0 mg/g。
凝胶色谱法测定高相对分子质量物质操作简便,但对于成分复杂的多组分生化药并不适用。鹿瓜多肽注射剂色谱流出峰难以有效分离,对积分和定量都造成一定困难(

Figure 2 SEC-HPLC chromatogram of reference substance (A, relative molecular weight 5 800) and test sample (B, batch No. 181018) of Cervus and Cucumis polypeptide injection
1: Insulin standard
为了寻找比凝胶色谱法更准确的测定方法,探索性研究尝试了Tricine-SDS-PAGE电泳(

Figure 3 Tricine-SDS-PAGE gel electrophotogram of high molecular weight substance of Cervus and Cucumis Polypeptide Injection (batch No. 181018)
1-5: Protein standard solution 1-5; 6, 7: Test samples batch no. 181018; M: Ultra-low range molecular weight marker
试剂盒法测定多肽含量的方法学验证结果显示,多肽在15.63~1 000 μg/mL的质量浓度范围内与吸收度呈良好的线性关系;平均加样回收率为99.4%,RSD为3.0%(n=9);最低检测限为15.63 μg/mL。
按法定标准福林酚法检验全部69批次样品,结果多肽含量合格率为100%。但由于现行标准只规定了含量测定值的下限而未设定上限,不符合药品质量控制要求。拟将含量限度统一修订为“含多肽以牛血清白蛋白计,应为标示量的80%~120%”。按照修订后的限度规定,用福林酚法和试剂盒法测定69批样品的合格率分别为84.1%和81.2%,其中不合格样品均是含量超上限(

Figure 4 Results of peptide content determination of Cervus and Cucumis polypeptide injection
3.7.1 方法的建立 配制质量浓度为0.125,0.25,0.5,1,2,4 mg/mL的鹿瓜多肽注射剂受试物溶液,与THP-1细胞共同孵育24、48、72 h后测定吸收度。结果显示,同浓度下受试物溶液随着作用时间的延长,对THP-1细胞的抑制作用逐渐增大;在同一作用时间下,随着受试物溶液浓度的增加,对THP-1细胞的抑制作用亦逐渐增大。鹿瓜多肽注射剂受试物均表现出明显的量效和时效关系,最终选用质量浓度为2 mg/mL、作用时间为 72 h 对随机24批样品的细胞增殖抑制效果进行比较。
3.7.2 样品测定结果
经探索性研究,在本实验条件下,A企业样品的抑制指数为9.6~16.8,批次之间最大差异为4.5%;B企业样品的抑制指数为2.4~3.4,批次之间最大差异为11.6%;C企业样品的抑制指数为1.4~1.9,批次之间最大差异为17.7%。3个企业样品在相同条件下,体外抗炎效果有一定的差异。A企业鹿瓜多肽注射剂对 THP-1 细胞的抑制作用明显优于B、C企业。
B企业鹿瓜多肽注射剂中检出高浓度的尸胺,经查阅相关文
经测定,鹿瓜多肽成品制剂及中间提取液中均未检出黄曲霉毒素残留,说明终产品尚不存在黄曲霉毒素污染的风险。但现场调研时发现甜瓜子的霉变现象,可能在提取纯化工艺中黄曲霉毒素被去除,或是霉变情况可能来源于其他真菌污染,如赭曲霉、青霉、镰刀霉等,因现场调研时未能及时留样,无从考证霉变的来源,未来将继续筛查其他真菌毒素的污染情况,进一步提升本品的安全性。
3家生产企业都有固定的甜瓜子供应商,并对甜瓜子进行自检,但其内控标准均未对酸价及过氧化值有要求。酸价和过氧化值在一定程度上可体现甜瓜子的新鲜程
鹿瓜多肽注射剂现行标准均采用福林酚法测定多肽含量,对该法产生干扰的物质较多,辅料右旋糖酐40和甘露醇在测定时均产生一定吸收度,导致结果不准
本研究从生物胺的含量、黄曲霉毒素测定以及甜瓜子原料的酸价、过氧化值的考察等多角度评价了鹿瓜多肽注射剂的新鲜度,并改进了质量标准中高相对分子质量物质和多肽含量测定的方法,同时对建议增订项目溶血与凝聚、生物学活性的测定做了初步探索。通过上述工作,可以为鹿瓜多肽注射剂质量标准的完善提供理论依据,并为该类多组分生化药安全性的提升奠定基础。
参 考 文 献
Zhang XL. Clinical application research progress of luguapolypeptide [J]. Guide Chin Med(中国医药指南), 2015, 13(13): 50-52. [百度学术]
Ruiz CC, Herrero AM. Impact of biogenic amines on food quality and safety [J]. Foods, 2019, 8(2): 62. [百度学术]
Hao AY, Zhao LY, Liu YH, et al. HPLC determination of aflatoxin residues in traditional Chinese medicine Yinpian with post column photochemical derivation and fluorescence detection [J]. Chin J Pharm Anal(药物分析杂志), 2012, 32(12): 2203-2207. [百度学术]
Zhang L, Dou X, Kong W, et al. Assessment of critical points and development of a practical strategy to extend the applicable scope of immunoaffinity column cleanup for aflatoxin detection in medicinal herbs [J]. J Chromatogr A, 2017, 1483: 56-63. [百度学术]
Schagger H. Tricine-SDS-PAGE [J]. Nat Protoc, 2006, 1(1): 16-22. [百度学术]
Fan F, Tu M, Liu M, et al. Isolation and characterization of lactoferrin peptides with stimulatory effect on osteoblast proliferation [J]. J Agric Food Chem, 2017, 65(33): 7179-7185. [百度学术]
Zhang Q, Han SX, Chen Y, et al. Quality control of ossotide for injection in inhibiting proliferation of monocyte-macrophages [J]. Chin J Exp Tradit Med Form(中国实验方剂学杂志), 2018, 24(13): 42-46. [百度学术]
Zhu P, Ding J, Zhou J, et al. Expression of CD147 on monocytes/macrophages in rheumatoid arthritis: its potential role in monocyte accumulation and matrix metalloproteinase production [J]. Arthritis Res Ther, 2005, 7(5): 1023-1033. [百度学术]
Maintz L, Novak N. Histamine and histamine intolerance [J]. Am J Clin Nutr, 2007, 85(5): 1185-1196. [百度学术]
Seki S, Misumi H, Tanaka T, et al. Effects of some polyamines, polyanions and antitumor drugs on replicative DNA synthesis and unscheduled DNA synthesis in vitro [J]. Acta Med Okayama, 1979, 33(3): 149-156. [百度学术]
Jellum E. Interaction of cystamine and cystamine derivatives with nucleic acids and nucleoproteins [J]. Int J Radiat Biol Relat Stud Phys Chem Med, 1965, 9(2): 185-200. [百度学术]
ICH. M7: assessment and control of DNA reactive (mutagenic) impurities in pharmaceuticals to limit potential carcinogenic risk [EB/OL]. 2014. [2020-04-28]. http: //www.ich.org/fileadmin/Public_Web_Site/ ICH_Products/Guidelines/Multidisciplinary/M7/M7_Step_4.pdf. [百度学术]
Del RB, Redruello B, Linares DM, et al. The biogenic amines putrescine and cadaverine show in vitro cytotoxicity at concentrations that can be found in foods[J].Sci Rep,2019,9(1): 120. [百度学术]
Gao MH, Wang M, Hou Z, et al. Determination of the composition and the contents of fatty acids in muskmelon seed by GC-MS and GC [J]. J Shenyang Pharm Univ(沈阳药科大学学报), 2015, 32(7): 556-560. [百度学术]
Haman N, Romano A, Asaduzzaman M, et al. A microcalorimetry study on the oxidation of linoleic acid and the control of rancidity [J]. Talanta, 2017, 164: 407-412. [百度学术]
Xue QR, Liang WY, Chen YK. Determination of peptide contents of hepatocyte growth-promoting factor for injection by acid hydrolytic method [J]. J China Pharm Univ(中国药科大学学报), 2011, 42(4): 333-336. [百度学术]
Wang C, Dong SS, Wang ZQ, et al. Research on the method for determining the in vitro activity of Cervus and Cucumis polypeptide [J]. Chin J Pharm Anal(药物分析杂志), 2018, 38(7): 1196-1201. [百度学术]