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术苓健脾胶囊对TNBS诱导的大鼠实验性结肠炎的作用及机制

  • 周梓琪 1
  • 李剑 2
  • 刘丹 1
  • 吴洁 1
1. 中国药科大学生命科学与技术学院,南京 211198; 2. 金陵药业股份有限公司,南京 210009

中图分类号: R967

最近更新:2023-03-13

DOI:10.11665/j.issn.1000-5048.20220923002

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摘要

探讨术苓健脾胶囊(术苓)对2,4,6-三硝基苯磺酸(TNBS)诱导的大鼠实验性结肠炎的作用及其机制。采用2.5% TNBS灌肠制备大鼠实验性结肠炎模型。将大鼠随机分为正常组、模型组、肠炎宁(180 mg/kg)组以及术苓低剂量(40 mg/kg)、高剂量(120 mg/kg)组。造模后药物治疗7 d后处死大鼠。其间每日记录大鼠体重,观察大鼠疾病活动状态。实验结束后,取结肠组织进行HE病理学分析、检测结肠组织中髓过氧化物酶(MPO)酶活、诱导型一氧化氮合酶(iNOS)、炎性细胞因子(IL-6、IL-1β、IFN-γ、IL-10)及紧密连接蛋白(occludin、ZO-1)的表达水平,并检测血清中炎性细胞因子(IL-6、IL-1β)的含量。结果表明,与模型组相比,术苓给药显著缓解了TNBS造模引起的体重下降、疾病活动指数(DAI)升高,缓解了结肠组织的缩短、水肿以及病理学损伤,减少了炎性细胞浸润、隐窝的破坏与杯状细胞的丢失,降低了结肠组织MPO酶活性、iNOS与炎性细胞因子的水平,增加了结肠紧密连接蛋白的表达,同时降低了血清中的炎性因子的含量。结果表明,术苓通过降低炎性因子水平,增加肠道紧密连接蛋白的表达,改善TNBS诱导的大鼠实验性结肠炎。本研究为术苓的临床应用提供了理论依据。

炎症性肠病(inflammatory bowel disease,IBD)影响着全球数百万人的生

1。由于肠屏障功能障碍和肠上皮细胞中的紧密连接受损,IBD可能由消化道慢性炎症状态逐渐发展为结肠2。IBD可以分为溃疡性结肠炎(ulcerative colitis,UC)和克罗恩病(Crohn's disease,CD)两种,通常伴有不同程度的肠道炎症和肠道黏膜损伤,表现为肠道微生物菌群紊乱,肠道免疫系统持续激活与炎症反应3。目前临床上治疗IBD的主要药物为氨基水杨酸盐​类和糖皮质激素类,但存在易复发,不良反应明显等缺4。因此迫切需要寻找不良反应小,疗效显著的药物用于临床治疗。

中药作用温和,对IBD的治疗表现出独特的抗炎能力和疗

5。根据中医理论,IBD的临床表现可分为“腹泻”“痢疾”或“腹痛”6。中药复方制剂由多种中药组成,往往通过多靶点来发挥治疗作用,在IBD的临床治疗中有广泛应7。例如,参苓白术散方剂是由十味治疗脾胃虚弱的草药组成的经典复方制剂,可通过促进大鼠结肠中抗炎因子的表达,增强免疫反应缓解结肠8。黄芩汤由四味中草药组成,可以恢复结肠炎小鼠肠道微生物群的多样性,并改善肠上皮细胞屏9。除此以外,大黄芍药汤、加味芍药汤、理中汤、四逆汤等经典方剂也逐渐应用于结肠炎的现代临床治疗,这表明中医药在治疗结肠炎中发挥着重要作10

本研究对象术苓健脾胶囊(简称术苓)是由骨碎补、黄柏、白芍、白术、一枝黄花、乌药、党参、铁苋菜、厚朴、茯苓、泽泻、防风、薏苡仁、大黄、桂枝、陈皮、槟榔、甘草等十八味中药组成的中药制剂。该方是在宋代官修方书《太平惠民和剂局方》中的“参苓白术散”的基础上加减化裁而来,具有健脾益肾、理气、化湿、清热的功效,临床上可以用于健脾补肾,治疗腹痛、腹泻等胃肠道疾病。基于“参苓白术散”的方解以及参考术苓的现行标准——国家食品药品监督管理局标准,并综合方中各味药的用量和功效,初步将骨碎补、党参、白术、茯苓、陈皮、白芍、薏苡仁、泽泻、黄柏定为方中君臣药。方中骨碎补肾强骨,用量最大是为君药,党参、白术、茯苓益气健脾渗湿同为君药,配伍陈皮、白芍助君药以健脾益气,兼能止泻;并用薏苡仁、泽泻、黄柏助白术、茯苓健脾渗湿,均为臣药。术苓散药性平和、温而不燥,是治疗脾虚湿盛泄泻的常用方。但是术苓对于IBD的治疗作用及其分子机制仍有待进一步的研究。

目前人类已经开发多种与人类IBD症状、形态和组织病理学相似的结肠炎动物模型。其中,2,4,6-三硝基苯磺酸(2,4,6-trinitrobenzenesulfonic acid,TNBS)与宿主蛋白结合后会引起机体抗原-抗体反应,导致透壁结肠炎,该模型症状、组织学改变以及T细胞免疫反应与CD更加类似,故多用于CD的研

11。本研究通过使用2.5% TNBS灌肠构建大鼠结肠炎模型,然后经口灌胃术苓,观察其对大鼠结肠炎的治疗作用,并进一步探讨可能的分子机制,为术苓的临床用药提供实验依据。

1 材 料

1.1 药物与试剂

术苓健脾胶囊(国药准字Z20140001,每粒0.27 g,金陵药业股份有限公司);肠炎宁片(国药准字Z36020518,每片0.42 g,江西康恩贝中药有限公司);TNBS(美国Sigma公司);水合氯醛(上海凌峰化学试剂有限公司);粪便隐血试剂盒(北京雷根生物技术有限公司);TMB显色液、RIPA裂解液和BCA蛋白定量试剂盒(上海碧云天生物技术有限公司);大鼠血清IL-6、IL-1β定量ELISA试剂盒(江苏雨桐生物科技有限公司);RNA样品稳定剂、Pro RNA提取试剂、Evo M-MLV反转录试剂盒和SYBR Green(湖南艾科瑞生物工程有限公司);4%多聚甲醛(国药集团药业股份有限公司);Tubulin抗体、occludin抗体与兔二抗(武汉三鹰生物技术有限公司);ZO-1抗体(北京博奥森生物技术有限公司)。

1.2 仪 器

超纯水仪(中国力康生物医疗科技控股有限公司);SPARK多功能酶标仪(瑞士Tecan公司);7300Plus实时荧光定量PCR仪(美国Thermo Fisher公司);K960 PCR热循环仪(中国力康生物医疗科技控股有限公司);PCR基因扩增仪(中国杭州晶格科学仪器有限公司)。

1.3 动 物

雄性SD大鼠,SPF级,50只,6 ~ 8周龄(体重180 ± 10 g),购于上海市计划生育科学研究所,实验动物合格证编号:No.20180006026499。动物均饲养于中国药科大学动物实验中心清洁级环境中,实验动物操作均符合中国药科大学实验动物福利伦理审查委员会标准。

2 方 法

2.1 动物分组与给药

50只SD大鼠适应性饲养1周,随机分为5组:对照组、模型组、肠炎宁(180 mg/kg)组、术苓低剂量(40 mg/kg)组、术苓高剂量(120 mg/kg)组,每组10只。大鼠造模前禁食不禁饮24 h,腹腔注射7%水合氯醛麻醉(300 mg/kg),液体石蜡润滑肛门管(直径2 mm)后,伸入距离大鼠肛门8 cm处,除对照组灌注生理盐水外,其余各组均缓缓推入5%TNBS与无水乙醇按2∶1体积比混合的造模剂(150 mg/kg)。大鼠倒置10 min后转移鼠笼内,等待其自然苏醒。造模当天根据分组灌胃不同剂量的药物治疗,治疗与造模同步,持续7 d。

2.2 体重、疾病活动指数(disease activity index,DAI)评分监测

每日观察动物疾病活动状态,称量体重,观察粪便性状及便血情况,粪便隐血试剂盒检测有无隐血。参照文献[

12]进行DAI评分,根据小鼠性状特征(体重变化率、粪便性状和是否便血)变化,由轻及重评为0 ~ 4分,DAI=(体重变化率 + 粪便性状 + 是否便血)/3。

2.3 结肠组织病理学检查

取动物结肠组织,采用4%多聚甲醛固定24 h,随后进行石蜡包埋、切片及苏木精-伊红(hematoxylin-eosin,HE)染色,使用倒置显微镜观察拍照后。参照文献[

13]进行组织病理学评分,根据结肠组织病变程度(炎症情况、病变深度、隐窝破坏和病变范围),由轻及重评为0 ~ 4分,最终组织病理学评分为4项之和。

2.4 结肠髓过氧化物酶(myeloperoxidase,MPO)活性检测

取结肠组织称重,每10 mg组织加入生理盐水100 μL,在冰中用电动组织研磨器研磨得到结肠组织匀浆,12 000 r/min 离心10 min(4 ℃)后得结肠匀浆上清液。取结肠匀浆上清液10 μL,加入96孔板中,按照TMB显色液说明书指示,加TMB显色液50 μL,空白对照孔中不加样品,其余步骤相同。在室温下反应5 min。再加入浓硫酸终止液50 μL终止反应。使用酶标仪测450 nm处的吸收度,MPO相对酶活(U/g) = (样品孔测定吸收度 - 空白对照孔吸收度)/取样量(g)。随后进行统计学分析。

2.5 RT-PCR检测炎性因子的表达

取小段结肠组织(于RNA样品稳定剂中保存),根据RNA提取试剂盒进行操作提取组织RNA,酶标仪检测RNA浓度,采用逆转录试剂盒将RNA逆转为cDNA,RT-qPCR检测结肠组织中的炎性因子IL-6、IL-1β、IL-10、IFN-γ、iNOS的RNA表达水平变化。实时荧光定量PCR仪调节参数:94 ℃ → 3 min;94 ℃ → 5 s;退火温度60 ℃ → 30 s(40个循环)。实验结果按照2-∆∆Ct进行计算,以GAPDH表达水平对其结果标准化。引物序列下表1所示。

Table 1  Sequences of RT-PCR primers
GenePrimer sequences (5′→3′)
GAPDH Forward CAAGTTCAACGGCACAGTCAAG
Reverse ACATACTCAGCACCAGCATCAC
IL-6 Forward TCTGCTCTGGTCTTCTGGAGT
Reverse GCATTGGAAGTTGGGGTAGGA
IL-1β Forward CCTATGTCTTGCCCGTGGAG
Reverse TCCTGGGGAAGGCATTAGGA
IL-10 Forward AATTGAACCACCCGGCATCT
Reverse TTTCCAAGGAGTTGCTCCCG
IFN-γ Forward CATCGCCAAGTTCGAGGTGA
Reverse CACCGACTCCTTTTCCGCTT
iNOS Forward TGCTTCTGTGCTAATGCGGA
Reverse CGCTTCCGACTTTCCTGTCT

2.6 Western blot检测结肠紧密连接蛋白的表达

取适量结肠组织,加入预冷的RIPA裂解液,在冰中用高速低温组织研磨仪充分研磨后,冰上裂解30 min,12 000 r/min,4 ℃,离心10 min,吸取上清液,按照BCA蛋白定量试剂盒的说明操作检测蛋白含量。使用12% SDS-PAGE进行蛋白质的分离,随后转移到PVDF膜上。转膜后使用5%脱脂牛奶室温封闭1 h,一抗(ZO-1,1∶1 000;occludin,1∶1 000;Tublin,1∶2 000)4 ℃孵育过夜,HRP标记的二抗室温孵育1 h,加入适量ECL曝光液曝光。使用Image J进行灰度分析。

2.7 血清ELISA检测

血清于5 000 r/min,4 ℃,离心5 min后收集上清液。根据ELISA试剂盒说明书测定IL-6、IL-1β。简言之,将待测样品加入样品孔,在37 ℃培养箱中孵育20 min,洗涤液洗涤5次,每孔加入酶标抗体,37 ℃孵育30 min,洗涤液洗涤,重复5次,拍干;在样品孔中加入显色剂A、B,盖上覆膜,轻轻振荡混匀,37 ℃避光孵育10 min;加入终止液,终止反应,立即用酶标仪测定450 nm处的吸收度。根据标准品浓度对应吸收度制作标准曲线,并根据样品吸收度计算样品相应浓度。

2.8 统计学分析

采用GraphPad Prism 8.0软件对数据进行统计分析。组别之间的显著性差异分析采用One-Way ANOVA 检验,组内两两数据比较进行LSD-t检验,以P < 0.05认为差异具有统计学意义。

3 结 果

3.1 术苓对结肠炎大鼠疾病表征的影响

与对照组相比,模型组大鼠体重显著下降(P < 0.05),并出现精神萎靡、毛色暗淡、倦怠懒动等症状,而术苓与肠炎宁给药治疗以后,体重变化率呈现出了上升的趋势,其中术苓高剂量组体重显著增加(P < 0.05,图1-A),精神状态改善;与模型组相比,术苓与肠炎宁给药降低了大鼠的死亡率(图1-B)。DAI评分是反映结肠炎严重程度的重要指标。与对照组相比,模型组DAI评分显著升高(P < 0.05),而术苓与肠炎宁给药显著降低了DAI评分(P < 0.05,图1-C)。

  

Figure 1  Effect of Zhuling Jianpi capsule (ZL) on disease characterization of colitis rats (x¯±s, n=8)

A: Body weight change; B: Survival rate; C: Disease activity index (DAI). CYN:Changyanning tablet ##P < 0. 01,###P < 0. 001 vs control group; **P < 0. 01 vs model group

3.2 术苓对结肠炎大鼠结肠组织病理学的影响

大鼠结肠照片如图2-A所示,对照组大鼠的肠壁纹理清晰,不增厚,肠道无粘连,而模型组结肠出现充血,肠壁增厚,肠道之间或结肠与周围组织例如与腹膜组织等严重粘连,且有粪便堆积,术苓与肠炎宁给药后水肿症状得到缓解;与对照组相比,模型组结肠长度显著缩短(P < 0.05),而术苓给药呈剂量依赖性显著增加了结肠长度(P < 0.05,图2-B)。结肠指数反映了结肠水肿程度。与对照组相比,模型组结肠水肿程度显著增加(P < 0.05),而术苓与肠炎宁给药后缓解了结肠水肿。

  

Figure 2  Effects of Zhuling Jianpi capsule on the morphologic changes of colon in colitis rats (x¯±s, n=8)

A: Colon image; B: Colon length; C:Relative colon index ###P < 0.001 vs control group; **P < 0.01 vs model group

结肠HE染色结果如图3所示,与对照组相比,模型组结肠组织杯状细胞丢失,隐窝结构被破坏,出现大量炎性细胞浸润,而术苓与肠炎宁给药后病理情况有所改善。对结肠HE切片进行评分发现,模型组评分显著高于对照组(P < 0.05),经药物治疗后,DAI评分显著下降(P < 0.05)。

  

Figure 3  Representative HE staining of colon tissue in colitis rats (200 × ) and histological score (x¯±s, n=8)

###P < 0.001 vs control group; *P < 0.05, **P < 0.01 vs model group

3.3 术苓对结肠炎大鼠结肠炎症因子表达的影响

MPO是来源于中性粒细胞的蛋白质,其酶活性反映中性粒细胞浸润能力。由图4-A所示,与对照组相比,模型组大鼠结肠组织MPO酶活性显著升高(P < 0.05),而术苓与肠炎宁治疗后能显著抑制MPO 酶活的升高(P < 0.05,图4-A)。RT-qPCR检测结肠中IL-6、IL-1β、IFN-γ、iNOS、IL-10的mRNA表达,结果发现,与对照组相比,模型组大鼠结肠中上述炎症因子的mRNA表达水平均显著增加(P < 0.05),而给药治疗后均显著下降(P < 0.05),且呈现剂量依赖性(图4-B ~ 4-F)。

  

Figure 4  Effect of Zhuling Jianpi capsule on inflammatory cytokines in the colon of colitis rats (x¯±s, n=8)

A: Colonic MPO enzyme activity; B-F: Gene expression of IL-1β,IL-6,IFN-γ,IL-10 and iNOS in colonic tissue examined by quantitative RT-qPCR #P < 0.05, ##P < 0.01, ###P < 0.001 vs control group; *P < 0.05,**P < 0.01,***P < 0.001 vs model group

3.4 术苓对结肠炎大鼠肠道紧密连接蛋白的影响

Occludin、ZO-1均为结肠上皮屏障的紧密连接蛋白。与对照组相比,模型组的occludin、ZO-1的蛋白表达显著下降(P < 0.05,图5-A-C),而给予术苓与肠炎宁治疗后,occludin、ZO-1的蛋白表达水平均显著上调。

  

Figure 5  Effects of Zhuling Jianpi capsule on intestinal tight junction protein expression of colitis rats (x¯±s, n=8)

A: Western blot of the expression of colonic occludin and ZO-1 protein; B: Quantification of the expression of ZO-1; C: Quantification of the expression of occludin #P < 0.05, ##P < 0.01, ###P < 0.001 vs control group; *P < 0.05, ***P < 0.001 vs model group

3.5 术苓对结肠炎大鼠血清炎症因子水平的影响

血清中炎性因子的含量是反映机体炎症状态的重要指标。通过ELISA检测发现,与对照组相比,模型组血清中IL-6、IL-1β水平显著增加(P < 0.05),而经术苓与肠炎宁治疗后,二者浓度均显著下降(P < 0.05,图6)。

  

Figure 6  Effects of Zhuling Jianpi capsule on serum inflammatory factors IL-6 (A) and IL-1β (B) in colitis rats (x¯±s, n=8)

##P < 0.01, ###P < 0.001 vs control group; **P < 0.01, ***P < 0.001 vs model group

4 讨 论

术苓由十八味中药组成。该复方中包含了多种抗炎药物。其中骨碎补在体内代谢的化学成分主要有黄酮类、三萜类、苯丙素类和木脂素类,具有保肾、消炎、降低血脂等作

14;而黄柏主要由盐酸小檗碱和盐酸巴马汀等生物活性成分组成,可以通过改善肠道菌群α多样性治疗小鼠腹15。白芍具有免疫调节、抗肿瘤、降血糖等作用,可以通过丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinases,MAPK)和核因子κB(nuclear factor kappa-B,NF-κB)通路抑制细胞凋亡来减少炎症反16。白术中含有多种生物活性化合物,例如小分子类(倍半萜类、三萜类、类固醇和香豆素)、生物活性多糖和糖蛋白17。据研究报道,白术多糖可以通过恢复隐窝结构和减少炎症细胞浸润来保护肠屏障功能,并调节肠道菌群丰18-19。白术内酯作为一种具有抗氧化和抗炎特性的倍半萜,主要通过阻断Toll样受体4(TLR4)-NF-κB和核因子E2相关因子2(Nrf2)通路来减少促炎细胞因子(TNF-α 和 IL-6)的产20

本实验使用TNBS构建大鼠结肠炎实验模型,结果表明,模型组大鼠表现出严重的体重下降、腹泻伴随便血、死亡率增加等现象,而术苓给药治疗后大鼠以上症状得到缓解,初步证明了术苓对于TNBS诱导的大鼠结肠炎的治疗作用。结肠长度缩短以及黏膜充血性水肿是IBD的重要特

21,术苓给药可以显著抑制结肠的缩短,并缓解了结肠水肿。杯状细胞是散布在肠上皮柱状细胞中的分泌细胞,可通过分泌黏蛋白形成黏液层,是肠道屏障的重要组成部22。隐窝主要是黏膜与黏膜下层向肠腔内突起的半环形皱襞,可增加结肠的表面积,促进肠道吸23。在本实验中,通过病理学检查发现,模型组大鼠表现为肠上皮细胞受损,杯状细胞破坏,隐窝结构丢失与炎性细胞浸润增加,而术苓给药后可以缓解上述病理损伤,部分恢复受损的肠道屏障功能。

MPO主要存在于中性粒细胞中。结肠组织中MPO的水平间接反映了肠组织中中性粒细胞浸润的程

24。IL-6、IL-1β和IFN-γ是重要的促炎性细胞因子,在结肠炎中大量分25。另外,有研究表明,在TNBS诱导的结肠炎大鼠的结肠与脾脏中iNOS 活性显著增加,iNOS可诱导炎性因子过度浸润,引发氧化应激而导致组织进一步损26。在本实验中,术苓给药后显著降低了大鼠结肠MPO酶活力、结肠炎症因子的转录水平,以及血清中IL-6、IL-1β含量,表明术苓给药后能显著降低大鼠结肠部位以及机体中的炎症状况。值得注意的是,IL-10作为抗炎因子,术苓治疗后,其转录水平也发生了上调,这可能是由于术苓给药促进了机体的抗炎修复系统有关。以occludin、ZO-1等为代表的紧密连接蛋白主要负责上皮细27构成屏障功能的形成。术苓给药可提高occludin、ZO-1的表达水平,显示其可以促进结肠上皮细胞屏障的恢复。

综上所述,术苓能显著改善TNBS构建的结肠炎大鼠的肠道炎症水平及肠上皮屏障功能。但是术苓的化学成分繁多,且化合物之间的协同作用对药效影响甚大,需要进一步探究其药效物质基础,阐明可能发挥作用的活性成分以进一步指导临床用药。

References

1

Flynn SEisenstein S. Inflammatory bowel disease presentation and diagnosis[J]. Surg Clin North Am2019996):1051-1062. [百度学术] 

2

Shah SCItzkowitz SH. Colorectal cancer in inflammatory bowel disease:mechanisms and management[J]. Gastroenterology20221623):715-730.e3. [百度学术] 

3

Balestrieri PRibolsi MGuarino MPLet al. Nutritional aspects in inflammatory bowel diseases[J]. Nutrients2020122):372. [百度学术] 

4

Naftali T. An overview of cannabis based treatment in Crohn's disease[J]. Expert Rev Gastroenterol Hepatol2020144):253-257. [百度学术] 

5

Yuan SLi YLi Jet al. Traditional Chinese medicine and natural products:potential approaches for inflammatory bowel disease[J]. Front Pharmacol202213892790. [百度学术] 

6

Sałaga MZatorski HSobczak Met al. Chinese herbal medicines in the treatment of IBD and colorectal cancer:a review[J]. Curr Treat Options Oncol2014153):405-420. [百度学术] 

7

Yang LLuo HTan DCet al. A recent update on the use of Chinese medicine in the treatment of inflammatory bowel disease[J]. Phytomedicine202192153709. [百度学术] 

8

Li ZHWang JCai RLet al. Effects of Shenling Baizhu Powder on the expressions of AQP3 and AQP4 in UC rats via ERK/p38 MAPK signal pathway[J]. Chin Tradit Pat Med(中成药)2015379):1883-1888. [百度学术] 

9

Li MYLuo HJWu Xet al. Anti-inflammatory effects of Huangqin Decoction on dextran sulfate sodium-induced ulcerative colitis in mice through regulation of the gut microbiota and suppression of the ras-PI3K-Akt-HIF-1α and NF-κB pathways[J]. Front Pharmacol2019101552. [百度学术] 

10

Liu YLi BGSu YHet al. Potential activity of Traditional Chinese Medicine against Ulcerative colitis:a review[J]. J Ethnopharmacol2022289115084. [百度学术] 

11

Alex PZachos NCNguyen Tet al. Distinct cytokine patterns identified from multiplex profiles of murine DSS and TNBS-induced colitis[J]. Inflamm Bowel Dis2009153):341-352. [百度学术] 

12

Zhang TTMei YLDong WFet al. Evaluation of protein arginine deiminase-4 inhibitor in TNBS- induced colitis in mice[J]. Int Immunopharmacol202084106583. [百度学术] 

13

Sałaga MMokrowiecka AZakrzewski PKet al. Experimental colitis in mice is attenuated by changes in the levels of endocannabinoid metabolites induced by selective inhibition of fatty acid amide hydrolase (FAAH)[J]. J Crohns Colitis201489):998-1009. [百度学术] 

14

Chen SQLiang WZhang XMet al. Research progress on chemical compositions and pharmacological action of Drynariae Rhizoma[J]. China J Chin Mater Med20214611):2737-2745. [百度学术] 

15

Xu BYYan YQHuang JCet al. Cortex Phellodendri extract's anti-diarrhea effect in mice related to its modification of gut microbiota[J]. Biomedecine Pharmacother2020123109720. [百度学术] 

16

Lin HHZhang WYJiang XPet al. Total glucosides of paeony ameliorates TNBS‑induced colitis by modulating differentiation of Th17/Treg cells and the secretion of cytokines[J]. Mol Med Rep2017166):8265-8276. [百度学术] 

17

Zhu BZhang QLHua JWet al. The traditional uses,phytochemistry,and pharmacology of Atractylodes macrocephala Koidz.:a review[J]. J Ethnopharmacol2018226143-167. [百度学术] 

18

Feng WWLiu JTan YZet al. Polysaccharides from Atractylodes macrocephala Koidz. Ameliorate ulcerative colitis via extensive modification of gut microbiota and host metabolism[J]. Food Res Int2020138Pt B):109777. [百度学术] 

19

Wang RJZhou GSWang MYet al. The metabolism of polysaccharide from Atractylodes macrocephala koidz and its effect on intestinal microflora[J]. Evid Based Complement Alternat Med20142014926381. [百度学术] 

20

Bailly C. Atractylenolides,essential components of Atractylodes-based traditional herbal medicines:antioxidant,anti-inflammatory and anticancer properties[J]. Eur J Pharmacol2021891173735. [百度学术] 

21

Gajendran MLoganathan PCatinella APet al. A comprehensive review and update on Crohn's disease[J]. Dis Mon2018642):20-57. [百度学术] 

22

Hu JYHuang HChe Yet al. Qingchang Huashi Formula attenuates DSS-induced colitis in mice by restoring gut microbiota-metabolism homeostasis and goblet cell function[J]. J Ethnopharmacol2021266113394. [百度学术] 

23

Pédron TNigro GSansonetti PJ. From homeostasis to pathology:decrypting microbe-host symbiotic signals in the intestinal crypt[J]. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci20163711707):20150500. [百度学术] 

24

Davies MJHawkins CL. The role of myeloperoxidase in biomolecule modification,chronic inflammation,and disease[J]. Antioxid Redox Signal20203213):957-981. [百度学术] 

25

Leppkes MNeurath MF. Cytokines in inflammatory bowel diseases - Update 2020[J]. Pharmacol Res2020158104835. [百度学术] 

26

Kankuri EAsmawi MZKorpela Ret al. Induction of iNOS in a rat model of acute colitis[J]. Inflammation1999232):141-152. [百度学术] 

27

He CMDeng JHu Xet al. Vitamin A inhibits the action of LPS on the intestinal epithelial barrier function and tight junction proteins[J]. Food Funct2019102):1235-1242. [百度学术]