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口服新型降糖多肽ODA的设计及其口服降糖活性

  • 安东贤
  • 姚文兵
  • 高向东
  • 田浤
中国药科大学生命科学与技术学院 江苏省生物药物成药性研究重点实验室,南京 211198

中图分类号: TQ936

最近更新:2023-09-11

DOI:10.11665/j.issn.1000-5048.2023032703

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目录contents

摘要

肠促胰岛素分泌肽胰高血糖素样肽-1(GLP-1)和葡萄糖依赖性促胰岛素释放多肽(GIP)能通过血糖依赖机制促进胰岛素分泌,其特异性结合受体GLP-1R和GIPR是治疗2型糖尿病的良好靶点。以本实验室前期设计的口服降糖多肽OHP2为基础,设计了可口服的新型降糖多肽——ODA。ODA较OHP2的亲脂性提高,在Caco-2细胞中的胞吞能力及跨细胞转运能力更强。ODA保留了OHP2对GLP-1R的激活能力,增强了与GIPR的结合能力。口服低剂量ODA(0.53 mg/kg)即可达到与口服OHP2(1.06 mg/kg)相当的降糖水平。研究结果显示,ODA是治疗2型糖尿病极具潜力的口服药物。

GLP-1由小肠L细胞分泌产生,经GLP-1R介导,以葡萄糖依赖的方式作用于胰岛β细胞,促进胰岛素分[

1],刺激β细胞的增殖和分化,抑制β细胞的凋亡,从而增加胰岛β细胞的数[2],抑制胰岛α细胞分泌胰高血糖[3],降低肝脏糖异[4]和肝脏脂肪贮存[5],还能减少肠蠕动、抑制胃排[6]、降低食欲,有助于控制摄食,减轻体[7]。GIP由小肠K细胞合成和分泌,与GIPR结合后发挥生物学效[8]。GIP既可以在高血糖条件下促进胰岛素分泌,也可以在低血糖条件下促进胰高血糖素分泌,因此可作为双功能多肽对血糖水平进行调控,防止血糖过度波[9]。GIP还能促进糖尿病模型鼠的胰岛β细胞生长分化与存[10]。长期使用GIP受体激动剂或者过表达GIP的小鼠糖代谢得到改善,且无体重增加的不良反[11-12]。GLP-1和GIP也被称为肠促胰岛素分泌肽,简称肠促[13]。目前认为,GLP-1和GIP这两种内源性多肽发挥了餐后促胰岛素分泌的大部分作[14],使得GLP-1R和GIPR成为了治疗2型糖尿病的良好靶点。

在目前的糖尿病治疗中,肠促肽类降糖药物占据了重要地位,其中以GLP-1R激动剂为[

15]。由于糖尿病是一种复杂的综合代谢性疾病,针对单一靶点的治疗药物往往具有局限性,而能够靶向多种靶点以实现协同效应的治疗药物不仅能使疗效最大化,还能降低不良反[16]。礼来制药公司研发的Tirzepatide(LY3298176)是1周注射1次的GLP-1R/GIPR双激动剂,已经获得FDA批准上市,用于治疗2型糖尿病。在与索马鲁肽头对头的临床试验比较中,高、中、低剂量组Tirzepatide的降糖效果均优于索马鲁[17]。在减重方面,高剂量的Tirzepatide效果优于索马鲁[18]。然而Tirzepatide和市场上绝大多数治疗2型糖尿病的受体激动剂药物一样,通过皮下注射给药,降低了患者的依从[19]。目前,丹麦诺和诺德公司研制的口服索马鲁肽(oral semaglutide,Rybelsus®)是市面上唯一一款可口服的GLP-1R激动剂,但是其在人体内的绝对生物利用度只有1%[20],因此开发患者依从性较高的口服肠促肽受体激动剂具有良好的应用前景。

本实验室前期基于GLP-1R激动剂Exendin-4的结构特征,利用计算机辅助设计得到了具有降糖活性的口服GLP-1R激动剂OHP2[

21]。与口服索马鲁肽不同,OHP2无促吸收剂单独给药即可被口服吸收,在糖尿病小鼠模型中表现出了良好的药效,如降低血糖、减少体质量和缓解高血脂[22]。本研究为进一步优化OHP2的治疗潜力,在保留了其降糖活性和口服吸收能力的基础上,引入了GIP的活性位点,以期为临床提供更多的可口服降糖多肽候选分子。

1 材 料

1.1 试 剂

DMEM高糖培养基、DMEM/F-12培养基(美国Gibco公司);胰蛋白酶、G418(美国Sigma-Aldrich公司);胎牛血清(FBS,美国CLARK Bioscience公司);Exendin-4(上海吉尔生化有限公司);OHP2(南京金斯瑞生物科技有限公司);ODA(合肥森尔生物科技有限公司);异硫氰酸荧光素(异构体Ⅰ,FITC,上海阿拉丁生化科技股份有限公司);Pierce BCA法蛋白测定试剂盒(美国Thermo Scientific公司);牛血清白蛋白(BSA,广州赛国生物科技有限责任公司);氨苄青霉素、链霉素、潮霉素(上海生工生物工程有限公司);Steady-Glo® Luciferase Assay System(美国Promega公司);RIPA(强)裂解液(上海碧云天生物技术有限公司)。其他试剂均为市售分析纯。

1.2 动 物

C57BL/6JGpt雄性小鼠(5周龄),SPF级,购自杭州子源实验动物科技有限公司,合格证号:SCXK(浙)2019-0004。所有动物实验均符合中国药科大学动物伦理委员会标准。

1.3 细胞株

CHO-GLP-1R-Luc(A11A)细胞株、人结直肠腺癌细胞株Caco-2由中国药科大学江苏省生物药物成药性研究重点实验室保存。

1.4 仪 器

AccuriC6 Plus流式细胞仪(美国BD公司);Infinite 200Pro多功能荧光酶标仪(瑞士Tecan公司);ERS-2细胞电阻仪(美国Merck Millipore公司);血糖仪(三诺生物传感股份有限公司)。

2 方 法

2.1 ODA序列设计和结构特征

2.1.1 ODA序列设计

基于OHP2的结构,引入GIP 活性位点,同时OHP2耐酶解位点保持稳定,得到增强GIP激动活性的ODA序列(由合肥森尔生物科技合成)。从RCSB PDB蛋白质数据库(https://www.rcsb.org)获取Exendin-4和GLP-1受体胞外结构域的PDB文件(5OTT)、GIP和GIP受体胞外结构域的PDB文件(2QKH),利用MOE(Molecular Operating Environment)分子操作系统和Rosetta Design在线设计服务系统(http://rosettadesign.med.unc.edu)进行亲和力打分计算。

2.1.2 圆二色光谱(CD)检测ODA的二级结构

使用去离子水溶解样品至0.5 mg/mL,用圆二色光谱仪Jasco J-810,在室温下以1 nm分辨率,50 nm/min的扫描速度在190 ~ 250 nm范围内对样品进行检测。

2.1.3 SWISS-MODEL模拟ODA的三级结构

利用蛋白质结构服务器SWISS-MODEL(http://swissmodel.expasy.org)进行同源建模,ODA和OHP2均以Exendin-4为模板序列,选择全球性模型质量估测(GMQE)值最高的建模结果。

2.2 ODA的入胞能力研究

2.2.1 流式细胞术法检测ODA在Caco-2细胞中的入胞能力

细胞铺板:Caco-2细胞密度为每毫升1 × 105个细胞。细胞给药:每孔加入FITC标记的ODA 5 μg,孵育2 h。细胞清洗:获取细胞并清洗后用200目细胞过滤网过滤。流式细胞术检测:经阴性对照管确定细胞群所在位置后,检测阴性对照管的荧光强度,并据此设立FITC阴性门和FITC阳性门。

2.2.2 荧光酶标仪法检测ODA在Caco-2细胞中的入胞能力

细胞培养铺板和给药方法同“2.2.1”项。细胞裂解:每孔加入RIPA细胞裂解液30 μL,室温置于摇板机上350 r/min裂解5 min。FITC标记ODA含量测定:使用多功能荧光酶标仪测定FITC标记的ODA荧光强度,条件为激发波长488 nm,发射波长525 nm。细胞总蛋白含量测定:BCA 试剂盒检测每孔内总蛋白浓度。计算每孔FITC标记的ODA的含量与细胞总蛋白含量的比值。

2.3 ODA的跨膜转运能力研究

2.3.1 细胞培养

细胞铺板:Caco-2细胞密度为每毫升1 × 105个细胞,每孔接种单细胞悬液250 μL于Transwell上室,下室加完全培养基1.5 mL,培养21 d。细胞给药:使用细胞电阻仪测定细胞跨膜电阻,选取跨膜电阻在200 ~ 1 000 Ω/cm2[

23],在上室加入FITC标记的ODA(0.2 mg/mL)。孵育8 h,每隔1小时从下室取样100 μL,然后向下室补充HBSS缓冲液100 μL。

2.3.2 跨膜转运量测定

使用多功能荧光酶标仪测定下室中FITC标记的ODA荧光强度,检测条件为激发波长488 nm,发射波长525 nm。

2.4 ODA的体外生物活性研究

2.4.1 荧光素酶报告基因法评价ODA对GLP-1R的激活能力

细胞培养:使用含10%胎牛血清、潮霉素B、G418的DMEM/F12培养基培养A11A细胞。细胞铺板:A11A细胞密度为每毫升2 × 105个细胞,培养4 h。细胞给药:ODA初始浓度为4 800 nmol/L,按4倍倍比梯度稀释得到9个浓度,每孔加入药物20 μL,孵育4 h。化学发光强度测定:每孔加入Steady-Glo 100 μL,350 r/min振荡15 min。振荡结束后每孔吸取样品180 μL转移至全白酶标板,使用多功能酶标仪测定化学发光强度。

2.4.2 分子对接模拟ODA与GIPR结合能力

靶标分子预处理:从RCSB PDB蛋白质数据库(https://www.rcsb.org)下载GIP和GIP受体胞外结构域的PDB文件(2QKH),选择Quick Prepare对分子进行加氢去水并赋予电荷,修正PDB结构缺陷。定义活性位点(site)以确定配体分子结合部位。配体分子预处理:通过MOE同源建模获得配体分子的PDB文件,加氢去水并赋予电荷。分子对接:选择蛋白-蛋白对接以半柔性对接方法计算结果。

2.5 ODA在小鼠体内的降糖活性研究

2.5.1 实验动物

选取5周龄的C57BL/6J雄性小鼠饲养一个星期适应环境。正式实验前小鼠需禁食16 h,并将小鼠随机分组并称重标记。

2.5.2 药物配制

3%碳酸氢钠溶液,Exendin-4溶液(0.02 mg/mL),葡萄糖溶液(0.2 g/mL),OHP2溶液(0.424 mg/mL),ODA溶液(0.848 mg/mL,0.424 mg/mL,0.212 mg/mL)。

2.5.3 给药测定

阳性对照组皮下注射给药Exendin-4溶液(0.10 mg/kg),实验组OHP2溶液(0.424 mg/mL)和ODA溶液(0.848 mg/mL,0.424 mg/mL,0.212 mg/mL)用3% NaHCO3溶液稀释4倍,口服灌胃给药。每组小鼠给药时刻记为-30 min,0 min时按2 g/kg的剂量给每组小鼠腹腔注射葡萄糖溶液,用血糖仪测量小鼠血糖值。

3 结 果

3.1 ODA序列设计和结构特征

基于GLP-1(HAEGTFTSDVSSYLEGQAAKEFIAWLVKGRG)、GIP(YAEGTFISDYSIAMDKIHQQDFVNWLLAQKGKKNDWKHNITQ)、Exendin-4(HGEGTFTSDLSKQMEEEAVRLFIEWLKNGGPSSGAPPPS)和OHP2(HGEGTFTSDLSSQMEEEAVKEFIEWLVNGGPSSGAPPPSC)的分子结构,在保留OHP2良好的抗酶解活性以及口服GLP-1R激动活性的前提下,通过进一步引入GIP的活性位点,本实验设计了一条新型口服降糖多肽——ODA。通过Rosetta Design评估其对GLP-1和GIP两个受体的亲和力,亲和力强度与打分绝对值呈正相关。打分结果显示,与OHP2相比,ODA保留了GLP结合能力,同时提高了GIP受体亲和力。(表1)。

Table 1  Affinity values of ODA and related peptides for GLP-1R and GIPR
PeptidesScore
GLP-1RGIPR
Exendin-4 -21.6 N/A
GIP (1-42) N/A -16.8
OHP2 -21.6 -15.3
ODA -22.5 -15.8

N/A: Not applicable; OHP2: Oral hypoglycemic peptide 2; ODA: Oral dual agonist

为了得到ODA的二级结构信息,本实验对ODA的CD谱进行分析。如图1-A所示,与Exendin-4和OHP2的谱线相似,ODA的谱线在193 nm附近处出现明显的正峰,在208 nm和222 nm处出现2个负峰,表明这3种分子的二级结构以α螺旋为主。此外,ODA的谱线向短波长方向移动,即发生蓝移,表明ODA的疏水性增加,亲水性降低。提示ODA有较好的亲脂性,能够较容易地与细胞膜产生接触。

  

Figure 1  Determination of Exendin-4, OHP2 and ODA

A: Analysis of the secondary structure of ODA by CD spectroscopy; B: Simulation of the tertiary structure of ODA based on SWISS-MODEL

本实验通过SWISS-MODEL模拟预测ODA的三级结构,由于序列的同源相似性,ODA和OHP2的三级结构模拟均以Exendin-4为模板序列。Exendin-4,OHP2和ODA的GMQE分别为0.71,0.73和0.68。如图1-B所示,ODA的三级结构在突变位点处与Exendin-4,OHP2均有一定差异。

3.2 ODA的胞吞能力优于OHP2

为了评价ODA的胞吞能力,对ODA进行了流式细胞术和荧光酶标仪法分析。如图2-A所示,与阴性对照Exendin-4相比,ODA组的FITC+细胞率显著提高(P < 0.01)。荧光酶标仪结果显示,孵育2 h后每毫克细胞总蛋白中FITC标记的ODA含量(5 055.0 ± 1 299.1 ng/mg)显著高于OHP2组(2 836.4 ± 471.1 ng/mg)(P < 0.01)(图2-B)。这些结果表明,在Caco-2细胞中,ODA比OHP2的入胞能力更强。

  

Figure 2  Endocytosis of Exendin-4, OHP2 and ODA in Caco-2 cells

A: Percentages of FITC+ cells incubated with FITC-labelled Exendin-4, OHP2 and ODA, measured by flow cytometry (x¯±s, n=3); B: Proportion of FITC-labelled Exendin-4, OHP2 and ODA to total proteins in cells, measured by fluorescence microplate reader (x¯±s, n=5) **P < 0.01, ***P < 0.001, ****P < 0.000 1 vs Exendin-4 group; ##P < 0.01 vs OHP2 group

3.3 ODA的转胞吞能力优于OHP2

本实验通过Transwell法考察ODA在单层细胞模型上的跨膜转运水平。结果如图3-A所示,在1、2、3、4和8 h的5个采样点,ODA组在下室中的浓度明显高于Exendin-4组和OHP2组。孵育8 h后,下室中ODA的质量浓度为(96.7 ± 6.3 ng/mL),显著高于Exendin-4组(53.6 ± 2.5 ng/mL)(P < 0.0001)和OHP2组(76.6 ± 4.3 ng/mL)(P < 0.01)(图3-B)。这些结果显示,在Caco-2细胞的Transwell单层细胞模型中,ODA具有更强的跨膜转运能力。

  

Figure 3  Transcytosis of Exendin-4, OHP2 and ODA in Caco-2 cells (x¯±s, n=3)

A: Concentration-time profiles of FITC-labelled drugs at the basolateral side of the Transwell model during 8 hours incubation; B: Concentration of FITC-labelled drugs at the basolateral side of Transwell model in the 8th hour **P < 0.01, ****P < 0.000 1 vs Exendin-4 group; ##P < 0.01 vs OHP2 group

3.4 ODA保留了GLP-1R激动活性并可结合GIPR

本实验采用荧光素酶报告基因法评估了ODA对GLP-1R的激活能力,结果如图4-A所示,Exendin-4、OHP2和ODA均呈剂量依赖性地激活GLP-1R下游信号通路,促进了荧光素酶的表达。OHP2和ODA激活GLP-1R的EC50分别为4.540和5.506 nmol/L,虽然ODA的EC50比OHP2略高,但和其处在同一数量级上,表明ODA保留了对GLP-1R的激动活性。利用MOE将ODA与GIPR胞外结构域进行分子对接模拟,预测ODA与GIPR的结合模式与相互作用。结果如图4-B所示,GIPR分子表面以亲水亲脂性展示,ODA序列中15Asp,16Lys,19Gln,20Lys,24Gln,26Leu与GIPR形成了较强的氢键,稳定了ODA与GIPR的结合,提示ODA具有潜在的GIPR激动能力。

  

Figure 4  ODA binding ability to GLP-1R and GIPR in vitro

A: Evaluation of the ability of Exendin-4, OHP2 and ODA to activate GLP-1R by A11A cellular luciferase reporter gene assays (x¯±s, n=3); B: Binding of ODA to GIPR, simulated by MOE molecular docking

3.5 ODA在小鼠体内的降糖活性优异

选取健康C57BL/6J小鼠,通过腹腔注射葡萄糖耐量试验(IPGTT)考察口服不同剂量ODA对血糖的控制作用,以皮下注射Exendin-4组为阳性对照,ODA单次口服给药的糖耐量试验结果如图5-A所示,与PBS组相比,口服高、中、低剂量的ODA后,小鼠血糖值相对于基础值的偏移显著降低,血糖时间曲线中峰值明显变低,曲线下面积显著减小。各组血糖时间曲线下面积计算结果显示,高剂量组(922.6 ± 93.7 mmol/L·min)、中剂量组(1 021.9 ± 84.8 mmol/L·min)和低剂量组(1 035.1 ± 152.0 mmol/L·min)的 AUC 同样显著低于PBS组(1 322.3 ± 99.5 mmol/L·min)(P < 0.000 1)(图5-B)。另一方面,口服ODA高、中、低剂量组与口服OHP2组(952.1 ± 81.5 mmol/L·min)相比,曲线下面积无显著性差异。这些结果表明,口服低剂量ODA(0.53 mg/kg)能达到与口服OHP2(1.06 mg/kg)相当的降糖水平,提示ODA具有较好的血糖控制能力。

  

Figure 5  IPGTT of ODA in healthy mice (x¯±s, n=8)

A: Fasting blood glucose versus time curve of IPGTT in healthy mice with Exendin-4 (sc, 0.10 mg/kg), OHP2 (ig, 1.06 mg/kg), ODA-H (ig, 2.12 mg/kg), ODA-M (ig, 1.06 mg/kg) and ODA-L (ig, 0.53 mg/kg) respectively; B: The area under the glucose levels curve (AUC) of IPGTT ****P < 0.000 1 vs vehicle group; ns: no significance vs OHP2 group

4 讨 论

口服索马鲁肽是目前市场上唯一一款可口服的GLP-1R激动剂,依赖促吸收剂N-[8-(2-羟基苯甲酰基)-氨基]辛酸钠(SNAC)才能实现口服吸收。SNAC可在胃部升高局部区域的pH,通过短期局部缓冲作用保护索马鲁肽防止胃蛋白酶的降[

24]。同时SNAC具有亲脂性,能够有效地插入到上皮细胞膜中,轻微改变细胞膜的流动性,促进索马鲁肽的跨细胞转[25]。因此SNAC只能短暂地促进吸收,口服索马鲁肽的绝对生物利用度依然较低,仅有0.4% ~ 1%[26]。本实验室前期工作中设计得到的OHP2与之相比更有优势,单独给药即有1.31%的绝对生物利用度,并且结构简单,无非天然氨基酸引入和侧链脂肪酸修饰[22]

综合代谢性疾病如肥胖和糖尿病等通常具有异质性和并发性等特点,单一靶点药物治疗有一定局限[

27]。因此本研究利用RCSB PDB蛋白数据库,MOE和Rosetta Design软件在OHP2的结构基础上引入了GIP的活性位点,得到新型口服降糖多肽ODA。通过CD光谱和SWISS-MODEL研究了ODA的分子结构,发现ODA与Exendin-4和OHP2相比,其亲水性降低,亲脂性增加,三级结构也有一定差异。通过流式细胞术和荧光酶标仪研究ODA的入胞能力,虽然ODA入胞的阳性细胞率小于OHP2组,但是入胞量即每毫克总蛋白中的ODA含量却几乎是OHP2的两倍,结果表明ODA的胞吞作用更强。并且通过Caco-2细胞构建Transwell单层细胞肠道吸收模型研究ODA的跨细胞转运能力,与入胞能力研究实验结果一致,ODA的跨细胞转运量显著高于Exendin-4组和OHP2组。这些结果表明ODA的口服吸收能力显著优于OHP2。利用基于A11A细胞的荧光素酶报告基因法研究ODA对GLP-1R的激动活性,虽然ODA的EC50比OHP2略高,但仍处于同一数量级,表明ODA较好地保留了对GLP-1R的激活能力。利用MOE进行了ODA与GIPR的分子对接,模拟了二者结合的空间状态和相互作用,ODA序列中多个氨基酸位点与GIPR形成了较强的氢键,表明ODA能与GIPR结合且较为稳定。通过IPGTT实验研究ODA在健康小鼠体内的血糖控制能力,结果表明,口服低剂量ODA即可发挥优异的降糖活性,展现出口服ODA治疗2型糖尿病的巨大潜力。

综上所述,本研究设计得到的口服ODA保留了OHP2对GLP-1R的激活能力,增强了与GIPR的结合能力,从而服用小剂量ODA即可达到降糖疗效。此外,简单的分子结构不仅更易于工业化生产,还能避免过度修饰带来的生物安全隐患。未来,口服ODA将为糖尿病患者提供更安全、更便利、更有效的用药选择。

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