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p-ERK1/2在一氧化氮诱导的HepG2细胞凋亡中的作用

刘智勇, 牛志远, 郑薇, 沈萍萍

刘智勇, 牛志远, 郑薇, 沈萍萍. p-ERK1/2在一氧化氮诱导的HepG2细胞凋亡中的作用[J]. 中国药科大学学报, 2012, 43(6): 530-534.
引用本文: 刘智勇, 牛志远, 郑薇, 沈萍萍. p-ERK1/2在一氧化氮诱导的HepG2细胞凋亡中的作用[J]. 中国药科大学学报, 2012, 43(6): 530-534.
LIU Zhi-yong, NIU Zhi-yuan, ZHENG Wei, SHEN Ping-ping. Effects of p-ERK1/2 on nitric oxide donor induced apoptosis of HepG2 cells[J]. Journal of China Pharmaceutical University, 2012, 43(6): 530-534.
Citation: LIU Zhi-yong, NIU Zhi-yuan, ZHENG Wei, SHEN Ping-ping. Effects of p-ERK1/2 on nitric oxide donor induced apoptosis of HepG2 cells[J]. Journal of China Pharmaceutical University, 2012, 43(6): 530-534.

p-ERK1/2在一氧化氮诱导的HepG2细胞凋亡中的作用

基金项目: 基金项目国家自然科学基金资助项目(No 31070764)

Effects of p-ERK1/2 on nitric oxide donor induced apoptosis of HepG2 cells

  • 摘要: 探讨p-ERK1/2在一氧化氮诱导的人肝癌细胞HepG2凋亡中的作用。用不同浓度的硝普钠(sodium nitroprusside ,SNP)处理HepG2细胞12 h,通过运用荧光探针技术与Griess法检测细胞内一氧化氮浓度,流式细胞术测定肿瘤细胞的凋亡率,Western blot检测p-ERK1/2蛋白的表达水平。结果发现:一氧化氮通过上调p-ERK1/2的表达水平诱导HepG2细胞的凋亡,1 mmol/L SNP可以诱导HepG2细胞凋亡,胞内一氧化氮含量与p-ERK1/2蛋白表达量均高于对照组,转染ERK1过磷酸化质粒则明显促进肿瘤细胞的凋亡。实验结果显示,一氧化氮通过上调p-ERK1/2的表达水平诱导HepG2细胞的凋亡,此研究发现了p-ERK1/2在一氧化氮诱导肿瘤细胞凋亡过程中的新作用,可进一步深入探讨其相关机制。
    Abstract: The role of p-ERK1/2 in nitric oxide induced cell apoptosis was investigated in this paper.Human hepatoma cells HepG2 were treated by sodium nitroprusside (SNP) in a dose-dependent manner with a control group.The amount of nitric oxide produced by SNP was determined by NO-DAF technique and Griess assay,respectively.Apoptosis of HepG2 cells was detected by flow cytometry and the level of p-ERK1/2 expression was determined by Western blot assay.Mutated ERK1 plasmid was constructed according to the handbook of site-directed gene mutagenesis kit and the plasmids were transfected by Lipofectamine 2000 reagent.Results showed 1 mmol/L SNP could effectively induce HepG2 cell apoptosis with increasing p-ERK1/2 expression and nitric oxide concentrations compared with the control group.Furthermore,pre-treatment of NO scavenger hemoglobin (HB) notably reduced the concentrations of nitric oxide and inhibited SNP induced cell apoptosis and activation of ERK1/2.Overexpression of dominate positive ERK1 plasmid which can phosphorylate PPARγ increased SNP induced cell apoptosis.These results suggest nitric oxide could induce cell apoptosis by up regulating the expression of p-ERK1/2,which implies the important role of p-ERK1/2 in nitric oxide induced cell apoptosis,and may shed a new light on the discovery of relevant mechanisms.
  • 干燥综合征(Sjögren syndrome)是由外分泌腺功能受损导致腺体分泌减少,引起口干、眼干等症状并伴有全身各组织器官受累的自身免疫性疾病[1]。该病可以单独发生,也可以与其他自身免疫性疾病(如类风湿关节炎、系统性红斑狼疮等)共同发生[2]。目前干燥综合征的发病机制尚未完全阐明,但多项研究表明其发病机制与自身免疫反应高度相关[3]

    信号转导和转录激活因子3(signal transducer and activator of transcription 3,STAT3)通过调控下游基因的表达参与细胞分化、增殖、凋亡、免疫调节等多种生物学过程[4]。研究表明STAT3是辅助性T细胞17(Th17)分化和发挥功能的关键因子[57]。Th17细胞的活化及其主要产物白细胞介素17(IL-17)等细胞因子的分泌与干燥综合征发病与进展密切相关,因此,本综述对STAT3调控Th17细胞分化在干燥综合征发病中的关键性作用进行总结,以期为干燥综合征的发病机制及潜在治疗靶点研究提供依据。

    淋巴细胞的异常活化和细胞因子的失衡在干燥综合征的发病过程中起着重要的作用。干燥综合征患者外周血和腺体组织中B淋巴细胞数量增加,B淋巴细胞因子(如IL-6、IL-8)水平升高,B细胞的异常激活会导致其分化成浆细胞并产生自身抗体(主要是抗Ro/SSA和La/SSB抗体),进而影响唾液腺、泪腺、肝脏等多种组织器官[89]。T淋巴细胞,尤其是αβ T细胞,在干燥综合征的发病过程中也发挥着重要的作用。研究表明,干燥综合征患者外分泌腺淋巴浸润增加,其中60%~70%为T淋巴细胞,70%以上的T淋巴细胞为CD4+ T辅助细胞[10]。干燥综合征患者的CD4+ T细胞中,存在大量的自反应T细胞克隆,这些自反应T细胞对自身抗原过度激活,导致免疫系统攻击自身组织,同时,这些异常激活的T细胞可以分泌多种细胞因子,如干扰素(interferon,IFN)-γ、IL-17等,进一步诱导炎症反应,加重组织损伤[1112]。除此之外,CD4+ T细胞在干燥综合征患者自身抗体产生、淋巴细胞浸润甚至淋巴瘤发展中起着至关重要的作用。CD4+ T细胞可分为不同亚群,其中Th17细胞通过分泌IL-17、IL-21和IL-22等细胞因子参与多种自身免疫性疾病,如类风湿性关节炎、银屑病、干燥综合征等[1314]

    Th17细胞的分化起始于免疫原抗原特异性激活T细胞受体(T cell receptor,TCR)和共刺激分子的信号传递,产生的信号被转导到细胞核中,导致核因子的激活和表达,从而启动细胞的分化[1516]。在初始阶段,转录因子扮演着促进Th17细胞分化的关键作用。其中,维甲酸受体相关孤儿受体(retinoic receptor-related orphan receptor,ROR)γt和RORα是最重要的转录因子之一,可以直接或间接地激活Th17细胞的特异性基因表达[17]。Th17细胞分化后表达特异性细胞因子如IL-17、IL-21等,刺激其他免疫细胞的活化和炎症反应,从而对免疫系统和组织炎症产生影响[1819]

    干燥综合征患者体内外周血和外分泌腺Th17细胞数量明显增加且患者的临床表现与Th17细胞分化和IL-17、IL-21等细胞因子分泌密切相关[2021]。研究表明,IL-17A和IL-17F水平升高与干燥综合征患者的疾病活动性相关[14]。IL-21和IL-22可增强免疫细胞的活性与迁移,介导干燥综合征相关器官的组织损伤和自身免疫反应,加重干燥综合征患者的组织损伤和炎症反应[2223]。在干燥综合征发病的早期阶段,外分泌腺淋巴结中的树突状细胞(dendritic cell,DC)分泌转化生长因子β(transforming growth factor beta,TGF-β)和IL-23等作为刺激信号促进Th17分化。外分泌腺上皮细胞在受到病毒、环境、基因等因素刺激活化后也可产生IL-1β、肿瘤坏死因子(tumor necrosis factor,TNF)-α等细胞因子促进Th17细胞的激活与分化。活化的Th17细胞释放IL-17、IL-22等细胞因子与基质和上皮细胞上的受体结合,进一步募集炎症因子、促进外分泌腺上皮细胞凋亡并刺激B细胞异常活化,进而在腺体形成淋巴细胞灶(lymphocytic foci,LF)和生发中心(germinal center,GC)样结构[2425],腺体结构与功能受损,进而导致眼干口干(见图1)。抑制Th17细胞分化及其功能是干燥综合征的潜在治疗靶点,本课题组前期研究表明,中药白芍干燥根的提取物白芍总苷可显著降低银屑病小鼠外周血及肠系膜淋巴结中CD4+ Th17细胞比例,改善银屑病皮损症状;白芍总苷也能显著增加干燥综合征小鼠泪液流量、唾液流量,减轻颌下腺免疫炎症反应,其机制与降低自发性干燥综合征模型小鼠——非肥胖性糖尿病小鼠(non obese diabetes,NOD)——肠系膜淋巴结和外周血中Th17细胞比例及抑制Th17分化相关因子IL-6、STAT3、RORγt等表达有关。以上结果表明Th17细胞参与干燥综合征等的自身免疫性疾病的发生与发展,抑制其分化可有效改善相关症状[2628]

    图  1  Th17在干燥综合征中的作用
    APC:抗原递呈细胞;DC:树突状细胞;IL:白细胞介素;MHC:主要组织相容性复合体;TCR:T细胞抗原受体;TGF-β:转化生长因子β;TNF-α:肿瘤坏死因子α;Th17:辅助性T细胞17

    Th17细胞在干燥综合征的发生与发展过程中起着重要调控作用,通过调控Th17细胞分化进而治疗干燥综合征的治疗策略已成为科学热点问题。研究表明,Th17细胞的分化受RORγt、RORα、STAT3、干扰素调节因子4(interferon regulatory factor 4,IRF4)、芳香烃受体(aryl hydrocarbon receptor,AHR)和碱性亮氨酸拉链ATF样转录因子(basic leucine zipper ATF-like transcription factor,BATF)等多种转录因子调节[29]。STAT3蛋白属于STAT蛋白家族,是细胞内信号转导通路中的重要组成部分,主要参与细胞内信息传递,调节基因表达,从而调节细胞的生长、分化和凋亡等生命活动过程[30]。目前已经发现有7种不同的STAT蛋白,分别为STAT1、STAT2、STAT3、STAT4、STAT5a、STAT5b和STAT6。STAT蛋白结构包括N端结构域、DNA结合区、src同源(src homology 2,SH2)结构域和C端转录激活区。在未激活状态下,STAT蛋白以单体蛋白存在,磷酸化后形成二聚体或二聚体复合物,进一步入核结合DNA并激活特定的基因表达。STAT蛋白的激活与调节主要与胞外信号分子诱导的酪氨酸激酶、丝氨酸/苏氨酸激酶等的磷酸化作用有关[31]。不同的STAT蛋白参与不同的生物过程,STAT3主要参与细胞增殖与分化。

    STAT3信号通路是细胞响应多种外界刺激的重要途径之一。细胞因子、生长因子、激素和细胞质蛋白等信号可以通过与细胞膜上的受体结合激活下游通路,STAT3的SH2结构域可以结合磷酸化的受体或其他蛋白质。STAT3被酪氨酸激酶磷酸化后形成二聚体并转移到细胞核中,结合到DNA上的靶基因启动子区域上,通过与其他转录因子的相互作用,调控基因转录,从而实现细胞对外界刺激的响应,影响细胞的增殖与分化[32]

    STAT3主要通过激活IL-6/IL-21信号通路,促进Th17分化转录因子RORγt表达,调控Th17细胞分化。在Th17细胞分化过程中,干细胞或较为成熟的淋巴细胞经抗原特异性刺激后,IL-6、IL-21、IL-23等细胞因子激活STAT3信号通路,介导STAT3磷酸化并转移入核,其中IL-6是激活STAT3信号通路并促进Th17分化的主要因子之一。IL-6与受体胞外结构域结合,激活信号转导分子糖蛋白130(glycoprotein,gp130),gp130进而激活下游分子酪氨酸蛋白激酶(tyrosine protein kinase,JAK),JAK使IL-6和IL-21受体胞内结构域的酪氨酸激酶磷酸化,从而促进STAT3磷酸化,磷酸化的STAT3在胞质中形成二聚体,进一步转移到细胞核中,并与核内的共激活因子结合,如环磷酸腺苷反应元件结合蛋白的结合蛋白(cyclic-AMP response binding protein binding protein,CBP)与高度同源的腺病毒E1A相关的300 kD蛋白(adenoviral E1A binding protein of 300 kD,p300)组成的CBP/p300,形成转录激活复合物[5,3334]。这些复合物进一步结合il-17il-23r的启动子,增加其转录和表达,促进Th17细胞分化。在细胞核中,STAT3还能结合到rorc启动子上,促进RORγt的表达,进而激活Th17分化[3536](见图2)。

    图  2  STAT3在Th17细胞分化中的作用
    BATF:碱性亮氨酸拉链ATF样转录因子;Foxp3:叉头样蛋白P3;gp130:糖蛋白130;IL:白细胞介素;IRF4:干扰素调节因子4;JAK:酪氨酸蛋白激酶;MHC:主要组织相容性复合体;TCR:T细胞抗原受体;ROR:维甲酸受体相关孤儿受体;SOCS:信号转导抑制蛋白;STAT3:信号转导和转录激活因子

    除直接作用外,STAT3还可以通过诱导其他转录因子或蛋白质的表达间接调控Th17细胞分化,例如,STAT3可通过激活IRF4和BATF的表达促进Th17细胞分化。IRF4是调控Th细胞分化至关重要的转录因子,可与RORγt协同促进Th17分化和IL-17的产生[37]。BATF是一种碱性转录因子,在T细胞、B细胞和DC细胞等多种免疫细胞中发挥作用。BATF被STAT3激活后,与RORγt共同作用于Th17分化相关基因的启动子区域,从而促进Th17分化[38]。同时,IRF4和BATF还通过抑制调节性T细胞(regulatory T cell,Treg)分化转录因子叉头样蛋白P3(forkhead box P3,Foxp3)的表达,进一步影响Th17和Treg的分化平衡[19]。这些转录因子相互作用,形成复杂的调控网络,参与Th17细胞的分化和功能的调节(图2)。

    此外,STAT3还可以通过抑制T-bet(T-box expressed in T cells)和Foxp3这两个关键转录因子的表达分别抑制Th1和Treg细胞分化,进一步促进Th17细胞分化[67]图2)。因此,STAT3在Th17细胞分化中起到了“抑制竞争对手”的作用。STAT3也可通过调节Th17细胞分化过程中所需的营养元素(如葡萄糖、脂肪酸等)的代谢,进一步影响Th17细胞分化[33]

    STAT3信号通路一方面促进Th17细胞的分化,另一方面通过负调控限制Th17细胞的分化和功能。STAT3信号通路可以通过调节细胞因子信号转导抑制蛋白3(suppressor of cytokine signaling,SOCS3)和蛋白酪氨酸磷酸酶(src homology-2 domain-containing protein tyrosine phosphatase,SHP)的表达,抑制JAK/STAT信号通路的活性,从而限制Th17细胞分化(图2)。在SOCS3缺失的小鼠中,Th17细胞分化增加,导致自身免疫性疾病的发生[39]

    STAT3通过调控细胞因子和转录因子表达,一方面精确调节Th17分化和功能,另一方面影响B淋巴细胞的异常激活,参与干燥综合征的发生和发展(图3)。研究发现,干燥综合征患者的唾液腺组织和外周血中STAT3的表达水平明显升高[40]。此外,干燥综合征患者的唾液腺上皮细胞中的STAT3磷酸化水平也显著增加,表明STAT3信号通路在干燥综合征中被过度激活[4142]

    图  3  STAT3在干燥综合征中的作用
    Bcl-2:B淋巴细胞瘤-2;Bax:Bcl-2相关X蛋白;MMP:基质金属蛋白酶

    STAT3参与B细胞的异常激活和分化,导致自身抗体的产生和免疫反应的加剧。此外,STAT3参与T细胞的异常激活和分化,IL-6和IL-21可通过激活STAT3信号通路促进Th17细胞的分化;IL-23也可激活STAT3信号通路,但其主要通过诱导IL-17和IL-22表达来维持和放大Th17细胞的免疫反应。同时,STAT3信号通路可调节RORγt的表达影响Th17分化进而影响干燥综合征的进展。此外,在干燥综合征患者中,SOCS3的表达水平显著降低,这可能是导致Th17细胞分化异常增加的重要机制之一[4344]。因此,在干燥综合征的发病过程中,STAT3信号通路异常激活,可能通过不同的机制影响Th17细胞的分化和功能,从而加重病情。

    STAT3信号通路还参与调节Treg细胞的分化和功能,与Th17细胞存在分化分叉的关系。Treg细胞具有抑制免疫应答和自身免疫的作用,是免疫耐受的关键细胞类型。在干燥综合征中,Treg细胞数量和功能都发生变化,导致免疫平衡失调。研究表明,STAT3信号通路的活化会抑制Treg细胞的分化和功能,从而加重干燥综合征的症状[45]

    STAT3的异常激活导致上皮细胞的凋亡:上皮细胞是一种重要的生物屏障,其在人体内起着保护和分隔的作用。腺上皮细胞的凋亡和脱落是干燥综合征病理过程中的重要表现之一。研究表明,STAT3激活后通过降低Bcl-2/Bax比等途径促进上皮细胞的凋亡[40,46]

    STAT3的异常激活导致炎症反应的异常:炎症反应是免疫系统为应对各种病原体和损伤而产生的一种生物学反应,但在干燥综合征中,炎症反应常常失控,导致病情加重。研究表明,STAT3的激活可以促进炎症因子的产生和炎症反应的进一步发展,从而加重干燥综合征的病情[42]

    STAT3的异常激活损伤组织屏障:在人体内,黏膜部位通过紧密连接蛋白的形成来支持上皮细胞的完整性,在对抗外界微生物中扮演着重要的生理角色。研究发现,STAT3信号通路的激活可以通过基质金属蛋白酶(matrix metalloproteinase,MMP)影响细胞间紧密连接和上皮细胞完整性,进一步加重干燥综合征的病情[47]图3)。

    干燥综合征的药物以局部对症治疗及系统治疗为主,治疗原则主要是缓解患者的局部干燥症状并减缓免疫系统损伤。

    干燥是干燥综合征患者最常见的病理特征之一,临床上常使用润滑剂来缓解眼睛和口腔的干燥。人工泪液、凝胶和软膏用于润滑眼睛,而人工唾液替代品和润喉糖则用于缓解口腔干燥。这些药物有助于保持受影响组织的湿度,防止角膜溃疡和龋齿等并发症,并提高患者生活质量。有研究推测STAT3通过与环氧化酶(cycloxygenase,COX)基因启动子结合进而调控其表达水平[48]。非甾体抗炎药(non-steroidal anti-inflammatory drugs,NSAIDs)通过抑制COX活性来减轻炎症反应并缓解疼痛治疗与干燥综合征相关的关节和肌肉疼痛。

    系统治疗通常使用免疫皮质类固醇、免疫抑制剂、生物制剂等药物对全身免疫进行调控进而达到治疗目的。皮质类固醇可通过减轻炎症反应,用于改善全身炎症症状。然而,长期使用皮质类固醇可能诱发如体重增加、糖尿病和骨质疏松症等明显不良反应,因此该药通常以小剂量辅助给药。

    对于前述无法充分控制的严重系统性症状,可使用免疫抑制药物,如羟氯喹、氨甲蝶呤和硫唑嘌呤等,这些药物通过抑制免疫系统发挥作用,减少炎症,防止对肺和肾等器官的损害。羟氯喹在临床实践中被广泛使用,尽管多项实验证明羟氯喹具有免疫调节作用,可以改善干燥综合征患者关节疼痛、疲劳和干燥等症状,但是与安慰剂组比较,并无显著性差异,这可能与临床试验选择的观察终点有关,因此需要进一步评估该药的临床治疗效果[49]

    近年来,生物制剂及小分子化合物也被用于治疗干燥综合征。这些药物通过靶向免疫系统中特定细胞而发挥作用,通常用于对其他药物治疗没有明显疗效的严重干燥综合征患者。利妥昔单抗是针对B细胞的单克隆抗体,临床试验表明,利妥昔单抗可以改善干燥、疲劳和关节疼痛等症状,并且降低血清中自身抗体的表达[50]。靶向IL-17的抑制剂近年来也被用于治疗自身免疫性疾病,一项小规模的临床试验显示,使用IL-17抑制剂司库奇尤单抗可以改善患者疾病活动度、口干和疲劳等主要症状[51]。此外,一些临床前试验也证实了,在动物模型中抑制IL-17可以明显改善干燥综合征的症状[14]

    STAT3是参与干燥综合征发生与发展的重要信号分子,抑制STAT3通路可降低炎症反应和自身免疫异常激活,具有潜在的治疗作用。目前,STAT3信号通路抑制剂用于治疗干燥综合征的研究仍处于临床试验阶段(见表1[52]。JAK/STAT3抑制剂通过干扰JAK与STAT3信号通路的激活来抑制细胞因子诱导的炎症反应和自身免疫攻击。小分子化合物如托法替尼和帕度珠单抗可抑制JAK的活性,以干燥综合征为适应证的相关研究已进入Ⅱ期临床试验阶段[53];芍药苷也具有抑制JAK/STAT3的作用,本课题组研究表明,芍药干燥根提取物白芍总苷可对干燥综合征产生一定治疗效果,目前临床Ⅰ期试验已经结束,即将开展临床Ⅱ期试验[27,54]。天然产物来源的具有STAT3抑制活性的化合物多为苯并比噻吩1,1-二氧化物、磺胺衍生物、醌类化合物、萜类化合物和类黄酮及其类似物,如白藜芦醇、黄芩素和乙酰肝素[55];此外,人工合成的STAT3抑制剂如STA-21和S3I-201在其他自身免疫性疾病中处于临床前研究阶段[56]

    表  1  治疗干燥综合征的靶向JAK/STAT3信号通路抑制剂
    作用机制名 称临床研究阶段参考文献
    JAK抑制剂,可抑制JAK1、JAK2和JAK3的活性,从而降低STAT3的活性托法替尼Ⅱ期[53]
    巴瑞克替尼Ⅱ期[5758]
    选择性JAK1抑制剂,通过抑制JAK1的活性抑制STAT3激活非戈替尼Ⅱ期[59]
    乌帕替尼Ⅰ期[60]
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    STAT3抑制剂主要通过阻断STAT3转导通路中异常的激活因子或上游激酶,或者直接针对性抑制STAT3的表达或与STAT3功能区结合影响其生物作用或结构稳定性,从而发挥抑制炎症的药理作用,改善干燥综合征的相关症状。尽管已经发现了许多针对STAT3治疗自身免疫性疾病的药物,但是这些药物种类和作用机制切入点较多,相关研究主要集中在细胞水平和动物水平研究,仅有少数STAT3抑制剂进入临床研究。对于STAT3抑制剂在治疗干燥综合征方面的应用研究,仍然存在一些亟待解决的问题。需要进一步探究如何提高抑制剂的治疗有效性,明确各类抑制剂的药理和毒理,探究如何靶向体内免疫细胞以增强其治疗效果,如何在体内控制细胞应用剂量,以及与传统治疗及其他分子靶向治疗的联合应用等问题,以实现最高效和最低不良反应的综合治疗。因此,需要在细胞学和动物学水平上深入研究STAT3抑制剂的作用机制和药效,进而将其应用于临床治疗干燥综合征的实践中。

    干燥综合征作为一种慢性自身免疫疾病,目前没有明确的治疗方法,在干燥综合征的发病机制中,Th17细胞和STAT3信号通路扮演着至关重要的角色,在干燥综合征药物研究中取得很大进展。一方面,针对Th17细胞和STAT3信号通路的治疗策略已经成为研究的热点,近年来,一些抑制Th17细胞功能的药物,如IL-17抑制剂、IL-21抑制剂等,已经在临床试验中得到了初步的验证。此外,一些针对STAT3信号通路的靶点药物,如STAT3抑制剂、JAK抑制剂等,也在研发之中。这些药物的研究和开发将有望为干燥综合征患者提供新的治疗选择。然而,干燥综合征的发病机制十分复杂,未来的研究也需要进一步探究其他可能的治疗靶点和机制,以实现更加有效的治疗。同时,通过深入研究Th17细胞和STAT3信号通路的作用机制,也可以更好地了解干燥综合征的发病过程,为更加精准地诊断和治疗提供依据。

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  • 刊出日期:  2012-12-24

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